专利名称：sFlt-1:血管生成因子络合物的测定的制作方法
技术领域：
本发明涉及免疫分析和体外诊断，更具体地讲涉及先兆子痫中包括的sFlt-Ι 血 管生成因子络合物的测定。
背景技术：
先兆子痫是一种高血压、浮肿和蛋白尿综合征，在孕妇中的患病率为5至10%，并 会导致高母儿发病率和死亡率。先兆子痫每年在全世界造成200，000例孕产妇死亡。先兆 子痫的临床症状通常出现在怀孕20周后，通常在妇女血压常规评估和尿样中蛋白存在的 检测过程中发现。然而，这类临床评估对该综合征的早期诊断是无效的。当临床评估不能 提供有效信息时，如果能够评估先兆子痫发展的可能性，和/或能够在妊娠早期诊断先兆 子痫，和/或能够在发病阶段诊断先兆子痫，则可以进行早期干预，并降低孕妇和发育中的 胎儿出现并发症的风险和死亡率。目前对于先兆子痫还没有已知的治疗方法。先兆子痫的严重程度可以为轻度至危 及生命。妊娠并发症包括肾衰竭、HELLP综合征(溶血、肝酶升高和血小板减少)、肝衰竭、 癫痫合并脑水肿，少数情况下还会导致死亡。潜在的胎儿并发症包括低出生体重、早产和死 亡。轻度先兆子痫可通过卧床休息和频繁监测进行治疗。对于中度至重症病例，建议住院 治疗，并开具降血压药物或抗癫痫药物以预防癫痫。如果病情危及母婴生命，应终止妊娠并 提前分娩。最近有人对与先兆子痫相关的分子机制进行了综述(Mutter andKarumanchi, Microvascular Research 75 1-8，2008 (Mutter 和 Karumanchi，微血管研究，第 75 卷第 1-8 页，2008年))。如Mutter和Karumanchi所指出，据信内皮功能障碍会促成先兆子痫的临 床综合征(Roberts and Cooper, Lancet 357 :53_56，2001 (Roberts 和 Cooper，柳叶刀，第 357卷第53-56页，2001年))。该疾病的许多症状可能是因内皮功能异常(包括动脉对外源 和内源刺激的高反应性、与肾小球通透性增加相关的蛋白尿、脑水肿和中枢神经系统渗透 性增加、以及导致HELLP综合征的血管血栓)引起的(Roberts，Semin Reprod Endocrinol 16 5-15,1998 ；Roberts and Cooper, Lancet 357 :53_56，2001 (Roberts 禾口 Cooper，柳叶 刀，第357卷第53-56页，2001年))。因此，人们一直在积极探寻引起或促成内皮功能障碍 的循环因子。胎儿和胎盘的正常发育由若干生长因子介导。其中一个生长因子是血管内皮生 长因子(VEGF)。VEGF是内皮细胞特异性有丝分裂原、血管生成诱导因子和血管通透性介 导因子。还已发现，VEGF对肾小球毛细血管的修复发挥着重要作用。VEGF作为同源二聚体与两种同源跨膜酪氨酸激酶受体_fms样酪氨酸激酶受体(Flt-I)(也称为血管内皮生 长因子受体1或VEGF-R1)和激酶结构域受体(Flk/KDR)(也称为血管内皮生长因子受体 2或VEGF-R2)中的一种结合，这两种受体在来自许多不同组织的内皮细胞中差异表达。 Flt-1(但不是Flk/KDR)由有助于胎盘形成的滋养层细胞高表达。胎盘生长因子(PlGF)是 VEGF家族的成员，它也与胎盘发育有关。PlGF由细胞滋养细胞和合体滋养细胞表达，并能 够诱导内皮细胞增殖、迁移和活化。PlGF作为同源二聚体与Flt-I受体(但不是Flk/KDR 受体)结合。PlGF和VEGF均有助于对胎盘发育至关重要的促有丝分裂活性和血管生成。人们已在人脐静脉内皮细胞的培养基中鉴定出一种可溶形式的Flt-I受体 (sFlt-Ι)，并随后证实了在胎盘组织中的体内表达。sFlt-Ι是无跨膜域和胞质域的Flt-I 受体的剪接变体(He 等人，Mol Endocrinol 13 :537_545，1999 ；Kendall 和 Thomas，Proc Natl Acad Sci USA 90 10705-10709，1993)。Beth Israel Deaconess Medical Center 禾口 Harvard MedicalSchool ^JffuA 员最近的工作表明，先兆子痫患者的胎盘瘦素产量和母体血清sFlt-Ι水平增加(Ahmad和 Ahmed, Circ Res 95 884-891, 2004 ；Chaiworapongsa ^A, Am J Obstet Gynecol 190 1541-1547，2004 ;Koga 等人，J Clin Endocrinol Metab 88 2348-2351, 2003 ；Maynard 等人，J Clin Invest 111 :649_658，2003 ;Shibata 等人，J ClinEndocrinol Metab 90: 4895-4903, 2005) ο sFlt_l能够与VEGF和PlGF结合。当在血清中处于游离状态时， sFlt-Ι可能会减弱这些生长因子分别与其同源受体Flt-I和Flk/KDR的结合(Kendall等 人，Biochem BiophysRes Commun 226:324-328,1996)。已经知道，除了 VEGF 和 PlGF 之 外，胎盘可以产生多种其他血管生成因子，其中包括血管生成素(Ang-Ι和Ang-2)及其受 体 Tie-2(Dunk 等人，Am J Pathol 156 :2185_2199，2000 ；Geva 等人，J Clin Endocrinol Metab 87 :4213_4224，2002 ;Goldman_Wohl 等人，Mol Hum Reprod 6 :81_87，2000)。据发 现，在患有先兆子痫的妇女血清中sFlt-Ι水平增加，VEGF和PlGF水平降低。最近人们关注到了另一种因子内皮糖蛋白(endoglin) (Eng)，这是一种转化生长 因子β 和β 3的辅助受体，是一种在先兆子痫患者胎盘中大量表达的蛋白。内皮糖蛋白 的胞外域可能会释放并在血清中发现，此时称其为可溶性内皮糖蛋白(sEng)。与sFlt-1 类似，sEng在发病前2至3个月在母体血清中增加(Levine等人，N Engl J Med 355 992-1005，2006)。通过识别先兆子痫发作前出现的循环血管生成因子失衡或其临床表现，可用于设 计筛选和/或诊断试验，从而识别存在先兆子痫风险的患者。这样的试验可以帮助临床 医生在病程早期进行密切的随访和治疗干预，因而具有宝贵的意义。使用采自先兆子痫 患者的血清进行的多项回顾性研究表明，血清中的sFlt-Ι浓度在发现任何临床表现之前 5 至 6 周一样高(Chaiworapongsa 等人，J Matern Fetal Neomatal Med 17 :3_18，2005 ； Hertig 等人，Clin Chem 50 :1702_1703，2004 ;Levine 等人，NEngl J Med 350:672-683， 2004 ;McKeeman 等人，Am J Obstet Gynecoll91 1240-1246，2004)。此外，游离的 VEGF 和 PlGF 较低(Hertig 等人，Clin Chem 50 :1702_1703，2004 ;Levine 等人，N Engl J Med350 672-683,2004)。最近有关血清中sFlt_l的增加或PlGF的减少是否可以准确预测先兆子 痫发作的系统性综述文献得出结论，妊娠末三个月的sFlt-Ι增加和PlGF减少与先兆子痫 相关，但现有数据还不足以建议以此作为筛选试验的内容(Widmer等人，Obstet Gynecol109 168-180,2007)。仍然需要更高效和/或更有效的方法来预测妇女发生先兆子痫的风险或确定其 是否已患有先兆子痫。在妊娠早期和/或在临床评估可能无法提供有效信息的疾病阶段， 预测和/或检测先兆子痫将是尤其有利的。
发明内容
在一个方面，本发明涉及一种测定sFlt_l:PlGF络合物的存在或量的方法。该方 法包括a)利用结合于PlGF的捕获剂来捕获该络合物，并用结合于sFlt_l和 sFlt-l:PlGF络合物中的一者或两者的检测剂来检测该络合物；或b)利用结合于sFlt-Ι的捕获剂来捕获该络合物，并用结合于PlGF和 sFlt-l:PlGF络合物中的一者或两者的检测剂来检测该络合物；或c)利用结合于sFlt_l:PlGF络合物的捕获剂来捕获该络合物，并用结合于 sFlt-l:PlGF络合物的检测剂来检测该络合物，其中捕获剂和检测剂能够同时结合于该络 合物；或d)利用结合于sFlt_l:PlGF络合物的捕获剂来捕获该络合物，并用与PlGF和 sFlt-Ι中的一者或两者结合的检测剂来检测该络合物。在另一方面，本发明涉及一种方法，该方法用于指导治疗或预测、检测或监测个体 中的血管、血管相关、肿瘤、肿瘤相关、心脏、心脏相关、先兆子痫或先兆子痫相关的疾病。该 方法包括a)测定采自个体的样本中sFlt_l:PlGF络合物的存在或量；和b)i)将sFlt_l:PlGF测定结果与一个或多个基准值进行比较；或ii)用一个或多 个数学运算或一个或多个算法将sFlt-l:PlGF络合物测定结果转化为一个或多个转换结 果，并将sFlt-1: PlGF络合物转换结果与一个或多个基准值进行比较；从而指导治疗或预测、检测或监测该疾病。在一个实施例中，该方法还可以包括a)测定样本中一种或多种分子实体的存在或量；和b)i)将分子实体测定结果和sFlt-1: PlGF络合物测定结果与一个或多个基准值 进行比较；或ii)利用一个或多个数学运算或一个或多个算法将分子实体测定结果和 sFlt-l:PlGF络合物测定结果转化为一个或多个转换结果，并将分子实体转换结果和 sFlt-l:PlGF转换结果与一个或多个基准值进行比较。在另一个实施例中，该方法还可以包括a)测定个体的一个或多个生理属性的值；和b)i)将生理属性测定值和分子实体测定结果以及sFlt_l:PlGF络合物测定结果 与一个或多个基准值进行比较；或ii)利用一个或多个数学运算或一个或多个算法将生理属性测定值和分子实体测 定结果以及sFlt-l:PlGF络合物测定结果转化为一个或多个转换结果，并将生理属性的值 转换结果和分子实体转换结果以及sFlt-l:PlGF转换结果与一个或多个基准值进行比较。
在一个附加的实施例中，该方法可以包括a)测定个体的一个或多个生理属性的值；和b)i)将生理属性测定值和sFlt_l:PlGF络合物测定结果与一个或多个基准值进 行比较；或ii)利用一个或多个数学运算或一个或多个算法将生理属性测定值和 sFlt-l:PlGF络合物测定结果转化为一个或多个转换结果，并将生理属性转换结果和sFlt_l:PlGF转换结果与一个或多个基准值进行比较。本发明的另一个方面涉及一种用于测定sFlt_l:PlGF络合物的存在或量的组合 物。该组合物包含a)结合于PlGF的捕获剂和结合于sFlt-1和sFlt_l:PlGF络合物中的一者或两者 的检测剂；或b)结合于sFlt-Ι的捕获剂和结合于PlGF和sFlt_l:PlGF络合物中的一者或两者 的检测剂；或c)结合于sFlt_l:PlGF络合物的捕获剂和结合于sFlt_l :P1GF络合物的检测剂， 其中捕获剂和检测剂能够同时结合于该络合物；或d)结合于sFlt_l:PlGF络合物的捕获剂和结合于PlGF和sFlt-Ι中的一者或两者 的检测剂。另外，本发明涉及包含纯化形式的sFlt_l:PlGF络合物的组合物。
图1示出了通过PlGF捕获和sFlt-Ι检测的方式测定sFlt_l :P1GF络合物的分析 结构图；图2示出了 sFlt-Ι PlGF-I络合物分析的剂量反应曲线；图3示出了根据sFlt-l:PlGF-l络合物分析的正常人(0)和先兆子痫患者(1)样 本结果的点图；图4示出了正常人(0)和先兆子痫患者(1)样本中的sFlt-1:PlGF络合物与游离 PlGF的计算比率的点图。
具体实施例方式如本文所用，sFlt-Ι是指可溶形式的fms样酪氨酸激酶受体(Flt-I)。Flt-I也 称为血管内皮生长因子受体1 (VEGFR-I)。sFlt-Ι (也称为sVEGFR-Ι)是无跨膜域和胞质域 的Flt-I的剪接变体。含有跨膜域和胞质域氨基酸的Flt-I的氨基酸序列由基因库登录 号P17948 (1338个氨基酸)提供。可溶形式的Flt-I缺失了第688-1338位氨基酸，并且第 657-687位氨基酸也有所不同，从而形成687个氨基酸的sFlt_l的氨基酸序列。sFlt_l异 构体在基因库登录号P17948中有所描述。如本文所用，PlGF是指胎盘生长因子。PlGF具有4种现已识别的异构体，其中包 括PlGF-I、P1GF-2、P1GF_3和P1GF-4，这些异构体因选择性剪接而产生。PlGF氨基酸序列 的一个例子由基因库登录号P49763 (221个氨基酸)提供。PlGF-I异构体缺失了第132-203
8位氨基酸，从而形成149个氨基酸的PlGF-I的氨基酸序列。PlGF-I异构体在基因库登录号 P49763中有所描述。sFlt-Ι结合于P1GF，本文将所得物称为sFlt-l:PlGF络合物。考虑到这些术语，在一个方面，本发明涉及一种测定sFlt_l:PlGF络合物的存在 或量的方法。该方法包括a)利用结合于PlGF的捕获剂来捕获该络合物，并用结合于sFlt_l和 sFlt-l:PlGF络合物中的一者或两者的检测剂来检测该络合物；或b)利用结合于sFlt-Ι的捕获剂来捕获该络合物，并用结合于PlGF和 sFlt-l:PlGF络合物中的一者或两者的检测剂来检测该络合物；或c)利用结合于sFlt_l:PlGF络合物的捕获剂来捕获该络合物，并用结合于 sFlt-l:PlGF络合物的检测剂来检测该络合物，其中捕获剂和检测剂能够同时结合于该络 合物；或d)利用结合于sFlt-1 :P1GF络合物的捕获剂来捕获该络合物，并用结合于PlGF和 sFlt-Ι中的一者或两者的检测剂来检测该络合物。在另一方面，本发明涉及一种方法，该方法用于指导治疗或预测、检测或监测个体 中的血管、血管相关、肿瘤、肿瘤相关、心脏、心脏相关、先兆子痫或先兆子痫相关的疾病。该 方法包括a)测定采自个体的样本中sFlt_l:PlGF络合物的存在或量；和b)i)将sFlt_l:PlGF测定结果与一个或多个基准值进行比较；或ii)利用一个或多个数学运算或一个或多个算法将sFlt_l:PlGF络合物测定结果 转化为一个或多个转换结果，并将sFlt-l:PlGF络合物转换结果与一个或多个基准值进行 比较；从而指导治疗或预测、检测或监测疾病。在一个实施例中，该方法还可以包括a)测定样本中一种或多种分子实体的存在或量；和b)i)将分子实体测定结果和sFlt-1: PlGF络合物测定结果与一个或多个基准值 进行比较；或ii)利用一个或多个数学运算或一个或多个算法将分子实体测定结果和 sFlt-l:PlGF络合物测定结果转化为一个或多个转换结果，并将分子实体转换结果和 sFlt-l:PlGF络合物转换结果与一个或多个基准值进行比较。在另一个实施例中，该方法还可以包括a)测定个体的一个或多个生理属性的值；和b)i)将生理属性测定值和分子实体测定结果以及sFlt_l:PlGF络合物测定结果 与一个或多个基准值进行比较；或ii)利用一个或多个数学运算或一个或多个算法将生理属性测定值和分子实体测 定结果以及sFlt-l:PlGF络合物测定结果转化为一个或多个转换结果，并将生理属性的值 转换结果和分子实体转换结果以及sFlt-l:PlGF络合物转换结果与一个或多个基准值进 行比较。在一个附加的实施例中，该方法可以包括
a)测定个体的一个或多个生理属性的值；和b)i)将生理属性测定值和sFlt_l:PlGF络合物测定结果与一个或多个基准值进 行比较；或ii)利用一个或多个数学运算或一个或多个算法将生理属性测定值和 sFlt_l:PlGF络合物测定结果转化为一个或多个转换结果，并将生理属性转换结果和 sFlt_l:PlGF络合物转换结果与一个或多个基准值进行比较。将本发明的概念延伸到所示优选实施例之外，本发明可以涉及能够彼此结合以形 成分子络合物的第一分子实体和第二分子实体，其中在优选实施例中，sFlt-1为第一分子 实体的例子，PlGF为第二分子实体的例子。sFlt-l:PlGF络合物是一例分子络合物。下文 将结合涉及血管生成受体sFlt-Ι及血管生成因子PlGF和VEGF的某些优选实施例详细描 述本发明。这些分子实体在先兆子痫和先兆子痫相关疾病方面尤其受关注。免疫分析_适用于本发明的一般讨论某些分析涉及特异性结合于待测物质(测定其存在或量)的试剂，它们通常被称 为结合分析。免疫分析通常被认为是使用抗体或抗体片段作为捕获剂和检测剂的结合分析 法。虽然本发明是结合捕获和检测抗体进行描述的，但也可以设想除抗体之外的结合剂。诸 如捕获抗体和检测抗体之类的结合剂特异性地结合于络合物形成中涉及的第一分子实体 或第二分子实体，或者特异性地结合于包含第一分子实体和第二分子实体的络合物。免疫分析可分为竞争性或非竞争性(夹心结构)免疫分析。在竞争性免疫分析 中，将标记形式的待测物质设置为与得自样本的(非标记)天然物质竞争。标记形式与天 然物质竞争，以结合于固定量的捕获抗体；捕获抗体能够结合于标记物质和(非标记)天然 物质，然而不是同时进行。根据被结合于捕获抗体的标记形式的物质或游离的(即未被结 合于捕获抗体)标记形式的物质发出的可测信号测定得自样本的物质的未知浓度。在非竞争(夹心结构)免疫分析中，让待测物质接触捕获抗体和检测抗体，这些抗 体通常在不同的表位结合于待测物质，或者在任何情况下能够同时结合于待测物质。可存 在结合于待测物质的不同表位的多种类型的捕获抗体和/或结合于待测物质的不同表位 的多种类型的检测抗体。检测抗体被标记，而捕获抗体通常被固定在或能够固定在固体支 承物上。常规标记包括放射性标记、酶、发色团、荧光团、稳定的自由基和酶辅因子、抑制剂 以及别构剂。免疫分析方法可采用任何适当的形式进行。它们可以在溶液中进行，在可溶组分 与不可溶组分分离的试验装置中进行，或者在干式分析元件中进行。此类免疫分析形式包 括(例如)酶联免疫吸附分析(ELISA)、免疫测定、点印迹(也称为狭缝印迹)等。免疫分 析可以为异相或均相的。在异相免疫分析中，通常通过一个或多个洗涤步骤将结合的组分 与游离的非结合的组分分离。在均相免疫分析中，不需要分离结合组分与游离组分。与免疫分析和免疫分析方法相关的出版物为数众多(“Practicallmmunoassay”， Butt ed，Marcel Dekker，1984 (实用免疫分析，Butt 编著，Marcel Dekker，1984 年)； “Immunochemistry of Solid Phase-ImmunoassayButler,CRC Press, 1991 (固相免疫分 析的免疫化学，Butler，CRC Press，1991 年)；“Immunoassay", Law ed, Taylor &Francis, 1996(免疫分析，Law 编著，Taylor & Francis，1996 年)；"Immunoassay", Eleftherios et al. ,Academic Press，1996 (免疫分析，Eleftherios 等人，Academic Press，1996 年)；
10"Principlesand Practice of Immunoassay", Second Edition, Price and Newmaneds, Macmillan，1997(免疫分析原理与实践，第二版，Price和Newman编著，Macmillan, 1997 年)；"Immunoassays in the ClinicalLaboratory，，，Nakamura et al. eds, Alan R Liss, Inc，1979 (临床实验室免疫分析，Nakamura 等人编著，Alan R Liss, Inc, 1979 ^ ) ；"Quantitative Enzyme Immunoassay", Engvall et al. eds, Blackwell Scientific Publications, 1978 (定量酶免疫分析，Engvall 等人编著，Blackwell Scientific Publications，1978 年)；Sommer etal.，Clin Chem 32 1770-1774，1986 (Sommer 等人，临 床化学，I986 年第 32 期第 I77O-I7M 页)；"A Primer for Multilayer Immunoassay", Berke, American Chemical Society Conference Proceeding, p303-312, Plenum Press, 1988 (多层免疫分析弓丨物，Berke, AmericanChemical Society Conference Proceeding, 第 303-312 页，PlenumPress，1988 年)；US 4, 200, 690 ；US 4, 207, 307 ；US 4, 407, 943 ； US4, 550，075 ；US 4，551，426 ；US 4，560，648 ；US 5，312，744 ；US5, 314，830 ；US 5，424，220 ； US 5, 415, 998 ；US 5, 501, 949 ；US5, 518, 887 ；US 5, 663, 054 ；US 5, 789, 261 ；US
5,935, 780 ；US5, 958, 339 ；US 6, 087, 188 ；US 6, 096, 563 ；US 6, 121, 006 ；US6, 143, 575 ；US
6,395, 503 ；US 6, 878, 515 ；US 6, 838, 250 ；US4, 372, 745 ；US 4, 670, 381 ；US 4, 483, 921 ； US 4，517，288 ；US4, 822，747 ；US 4，824，778 ；US 4，829，012 ；US 4，839，299 ；US4, 847，194 ； US 4, 847, 195 ；US 4, 853, 335 ；US 4, 855, 226 ；US4, 857, 453 ；US 4, 857, 454 ；US 4，859，610 ；US 4，863，876 ；US4, 868，106 ；US 4，868，130 ；US 4，879，219 ；US 5，776，933。有关干式免疫分析元件的详细信息可见于下列出版物及其中引用的参考文献US 3, 867, 258,US 3, 992, 158,US 4, 042, 435,US 4, 050, 898,US 4, 066, 403,US 4, 153, 668,US 4，258，001、US 4，292，272、US4, 430，436。支承物可以为任何不溶的材料或可通过后续反应制成不溶的。可根据吸引和使捕 获剂固定的内在能力选择支承物。作为另外一种选择，可以在支承物上固定能够吸引和使 捕获剂固定的交联剂。交联剂可以(例如)包括与捕获剂本身或捕获剂缀合的带电物质电 荷相反的带电物质。通常，交联剂可以为被固定到(连接到)支承物上的任何结合伴侣(优 选地为特异性的)，并能够通过结合反应使捕获剂固定。交联剂能够使捕获剂在执行分析 前或执行分析中间接地结合于支承物。支承物可以为(例如)塑料、衍生塑料、磁性或非磁 性金属、玻璃或硅制成的(包括例如)试管、微孔、微量滴定孔、膜、板、珠、微粒、片和本领域 普通技术人员已知的其他构型。支承物可以为在水性组合物中不溶或基本上不溶的多孔或 无孔材料。支承物能够以多种不同的形式和构型存在容器、管、微量滴定板、球、微粒、杆、 带、滤纸、色谱纸、膜等。本发明的方法可适用于采用微粒技术的系统(包括自动和半自动系统)，其中固 体支承物包括US 5，006，309和US 5，089，424中所述的微粒。在优选的形式中，捕获剂连接到生物素并通过生物素结合于亲和素、链霉亲和素 或其他生物素结合剂而被固定到微孔的内表面上。有许多专利公布涉及将分子结合于支承物。例如US 4，624，930、US5, 061, 640、 US 4, 945, 042,US 4, 885, 255,US 5, 362, 624,US5, 277, 589,US 5, 268, 306,US 5，376，557、 US 5，858，803、US5, 126，241、US 5，362，655、US 5，437，981、US 5，792，606、US5, 863，740、 US 5，935, 780、US 6，391, 571。
在异相免疫分析中，可通过以下方法实现游离组分与结合组分的分离让合适的 液体洗涤溶液经过支承物；过滤离开支承物的可溶性游离组分；免疫沉淀游离组分，用诸 如聚乙二醇或硫酸铵之类的物质进行沉淀；磁分离或结合于不同的支承物；等等。检测剂可以为直接可检测或间接可检测。它可以具有能够直接或间接发射信号的 标签。合适的标签是本领域已知的，并包括(例如)辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶、荧光标 记、可检测的示踪剂等等。标签可以为能够直接引发可检测信号(通常为光学信号吸光 度、反射率、发光和荧光)的化学实体。信号可源于放射性。它可以为伏安测量或电导测量 的信号等。本身能够产生可测信号的可直接检测的标签可包括能够发出荧光或磷光的有机 物和无机物，例如但不限于荧光素及其衍生物、N-(3-fluoranthyl)-马来酰亚胺、放射性核 素(例如碳14、氚、磷32)；偶氮-氧代(azo-oxo)、偶氮-双偶氮、吖嗪、噁嗪、噻嗪、喹啉、 吲达胺、吡喃酮和吡唑啉酮染料。通常，标签可以为化学元素、化合物或蛋白。可间接检测的标签通常需要有用来产生可测信号的一种或多种附加物质存在。此 类标记包括需要有底物、辅因子或金属存在的酶。例如，辣根过氧化物酶是一种需要电子供 体和氧化剂来产生信号的标签例如，需要鲁米诺和过氧化氢来产生化学发光，或需要三芳 基咪唑和过氧化氢来产生染料。与一些优选实施例有关的捕获剂和/或检测剂是能够特异性结合于sFlt-1、 VEGF、P1GF或包含sFlt-1和血管生成因子的络合物的试剂。一般而言，鉴于第一分子实体 和第二分子实体能够结合而形成包含这两种分子实体的络合物，因此除非另外指明，否则 写明结合或特异性结合于第一分子实体的捕获剂或检测剂能够结合于游离的第一分子实 体并结合于当其被结合于络合物中的第二分子实体时的第一分子实体。类似地，除非另外 指明，否则写明结合或特异性结合于第二分子实体的捕获剂或检测剂能够结合于游离的第 二分子实体并结合于当其被结合于络合物中的第一分子实体时的第二分子实体。写明结合 于络合物或特异性结合于络合物的捕获剂或检测剂不结合或基本上不结合于游离的第一 分子实体或游离的第二分子实体。捕获剂和检测剂包括抗体或其片段、以及包含得自不同生物来源(例如人/小鼠、 小鼠/山羊、人/山羊)的抗体片段的嵌合抗体。它们包括非抗体蛋白和肽，例如血管生成 因子、血管生成受体和非蛋白结合剂。单克隆抗体或多克隆抗体或单克隆与多克隆抗体的 组合代表了优选的捕获剂和检测剂。术语“样本”或“生物样本”包括来自活生物体或早先活的生物体的任何量的物质。 此类生物包括但不限于人、小鼠、猴、大鼠、兔、马和其他动物。样本包括但不限于血液、血 清、尿液、泪液、细胞、器官、组织、骨骼、骨髓、淋巴、淋巴结、滑膜组织、软骨细胞、滑膜巨噬 细胞、内皮细胞和皮肤。分子络合物_适用于本发明的捕获和检测下面将根据对包含分子实体F和分子实体P的分子络合物FP的测定，象征性地描 述多个免疫分析实施例。在一种免疫分析的实施例中，FP可用对F具特异性的被固定的或可被固定的捕获 剂来捕获。捕获剂能够结合于游离的F和络合物FP中的F。“游离的卞是指不结合于P但 可被结合于其他分子实体的F。检测用优选地由辣根过氧化物酶标记的检测剂进行，该检测 剂特异性地结合于P，并能够结合于游离的P和络合物FP中的P。类似地，“游离的”P是指不被结合于F但可以结合于其他分子实体的P。在另一免疫分析实施例中，检测用优选地由 辣根过氧化物酶标记的检测剂进行，该检测剂特异性地结合于络合物FP，而不结合或基本 上不结合于游离的F或游离的P。在一个类似的免疫分析实施例中，可使用对P具特异性的被固定的或可被固定的 捕获剂来捕获FP。捕获剂能够结合于游离的P和络合物FP中的P。检测用对F具特异性 的检测剂进行，该检测剂能够结合于游离的F和络合物FP中的F。或者，可以用对络合物 FP具特异性的检测剂进行检测，该检测剂不结合或基本上不结合于游离的F或游离的P。在另一免疫分析实施例中，可采用结合于络合物FP的被固定的或可被固定的捕 获剂来捕获络合物FP，该捕获剂不结合或基本上不结合于游离的F或游离的P。采用对络 合物FP也具特异性的检测剂进行检测，该检测剂不结合或基本上不结合于游离的F或游离 的P。在该实施例中，捕获剂和检测剂结合于络合物FP的不同位点，或者在任何情况下能够 同时结合于络合物FP。作为另外一种选择，可以采用对F具特异性的检测剂进行检测，该检 测剂能够结合于游离的F或络合物FP中的F。或者，可以用对P具特异性的检测剂进行检 测，该检测剂能够结合于游离的P或络合物FP中的P。或者，可以用对F具特异性的检测剂 (能够结合于游离的F或络合物FP中的F)和对P具特异性的检测剂(能够结合于游离的 P或络合物FP中的P)进行检测。在上述免疫分析实施例中，当期望或需要分离时，可以对非结合组分和结合组分 进行分离。例如，当用对F具特异性的且能够结合于游离的F和络合物FP (从而捕获并使 游离的F和络合物FP固定)的被固定的捕获剂来捕获FP，并且在捕获后用对P具特异性的 且能够结合于游离的P和络合物FP的检测剂来检测FP时，将进行非结合组分与结合组分 的分离(通常通过洗涤过程)。因此，结合的游离F和结合的FP被从非结合的游离F、非结 合的FP和游离的P (P未被捕获，因而未结合)分离。然后引入检测剂，以便在无游离P (已 在洗涤过程中除去)干扰的情况下结合于被捕获和被固定的络合物FP。可用于捕获和检测sFlt_l:PlGF络合物的抗体的例子包括但不限于小鼠单克 隆抗 sFlt-Ι 抗体 RD-1-49560(R&D Systems)、3661_M16(R&DSystems)和 4449_M24(R&D Systems)；小鼠单克隆抗sFlt-1抗体RD-7-49566 (R&D Systems)、小鼠单克隆抗sFlt-1抗 体 M14 (Ortho-ClinicalDiagnostics)、小鼠单克隆抗 PlGF 抗体 37203 (R&D Systems)、大鼠 单克隆抗PlGF抗体358932 (R&D Systems)、大鼠单克隆抗PlGF抗体 358905 (R&D Systems)、 单克隆抗体 358932 (R&D Systems)和 261 (OrthoClinical Diagnostics)。根据本发明，还提供了用于免疫分析实施例(即用于测定sFlt_l:PlGF络合物的 存在或量)的组合物。该组合物包含a)结合于PlGF的捕获剂和结合于SFlt-I和sFlt-l:PlGF络合物中的一者或两者 的检测剂；或b)结合于SFlt-I的捕获剂和结合于PlGF和SFlt-l:PlGF络合物中的一者或两者 的检测剂；或c)结合于sFlt_l:PlGF络合物的捕获剂和结合于sFlt_l :P1GF络合物的检测剂， 其中捕获剂和检测剂能同时结合于该络合物；或d)结合于sFlt_l:PlGF络合物的捕获剂和结合于PlGF和sFlt-Ι中的一者或两者 的检测剂。
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如本发明的方法中那样，捕获剂和检测剂中的一者或两者可以为多克隆抗体，或 者捕获剂和检测剂中的一者或两者可以为单克隆抗体，或者捕获剂和检测剂中的一者或两 者可以为单克隆抗体和多克隆抗体的组合。适用于本发明的分析校ιΗ和件能验证免疫分析需要校正和/或验证是否以规定的精度与准度检测到目标被分析物。就 测定络合物FP的免疫分析而言，可使用包含纯化形式的分子络合物FP的组合物进行这种 校正和验证。在本发明的上下文中，术语“纯化”是指络合物FP已与游离的F和游离的P 分离。络合物FP与游离的F和游离的P的分离可使用一种或多种熟知的方法进行，例如 依靠各组分对特异性结合伴侣的亲和力(例如，F结合于(优选地固定的)P、P结合于(优 选地固定的)F)或各组分与其他结合伴侣的结合(例如，F结合于(优选地固定的)抗F 抗体、P结合于(优选地固定的)抗P抗体、或FP结合于(优选地固定的)抗FP抗体)或 各组分与其他类型的特异性结合伴侣的结合的方法(亲和色谱法)；或者，通过离子交换色 谱法、金属离子交换色谱法、配体交换色谱法或疏水色谱法；或者，依靠络合物及其分子实 体组分之间的质量和/或大小差异和/或净电荷差异的方法。这类方法包括尺寸排阻色谱 法、离心法、分子筛分法(例如膜过滤)和电泳法等等。如果络合物在分离和随后引入储存组合物(通常为液体制剂)的过程中稳定(其 中稳定意味着在这些过程中不易分离而形成大量游离的F和游离的P)，则将包含该络合物 的组合物置于适当的条件下以更长时间地保持稳定性。例如，当组合物为液态时，可以将其 储存在小于或等于约4°C的低温下；或者将液体组合物在低于0°C的温度下冷冻并保持固 态；或者可以将其冻干并在适当的温度(甚至可以大于约20°C )下保持冻干状态。从贮存 库取出后(必要时在解冻或复水之后)，组合物应当在用于分析校正或验证的条件下在可 接受的时间段内稳定。可以制备络合物的改性形式，其中F和P彼此共价结合(例如，sFlt-Ι共价结合 于P1GF)。在解离而形成游离的F和游离的P方面，此共价改性形式的FP将是稳定的。优 选地，改性的共价络合物FP和非共价络合物FP相对于捕获剂和检测剂具有基本上相同或 相似的结合特性。如果改性的、共价形式的FP和未改性的、非共价形式或天然形式的络合 物FP相对于捕获剂和检测剂不具有基本上相同或足够相似的结合特性，则可以如分析技 术中所公知的，应用合适的数学校正来补偿结合特性的差异。在本发明的上下文中，应当理 解FP的“形式”这一术语应涵盖完整的、非共价的、从合适来源(例如人血清、胎盘组织或 体液等)纯化/分离的天然FP、由天然F和天然P或天然F和重组P或重组F和重组P制 备的非共价FP以及由天然F和天然P或天然F和重组P或重组F和重组P制备的改性的、 共价结合的FP (F和P彼此共价结合)。根据本发明的这个方面，还提供了包含纯化形式的sFlt_l:PlGF络合物的 组合物。sFlt-Ι PlGF络合物的sFlt-Ι和PlGF中的一者或两者可以为天然的，或者 sFlt-l:PlGF络合物的sFlt-Ι和PlGF中的一者或两者可以为重组的。预测、检测/诊断、监测适用于本发明的疾病常规的做法是通过测定采自个体的生物样本中单种物质(标记物/生物标记 物)的存在或量，确定个体是否患有特定疾病(检测/诊断)，是否可能患病(预测)，以及 确定疾病的进展(监测)或个体是否对治疗做出响应(监测)。
例如，为了确诊是否患有糖尿病或监测对诊断为患有糖尿病的个体的疗效，常常 测定个体尿液或血清样本中葡萄糖(定性分析)的存在或葡萄糖的量(定量分析)。在定 性和定量分析中将形成与样本中的葡萄糖量成比例的光学信号，通常为比色信号。在一类 比色测定中，可通过定性的方式在视觉上确定形成的染料的量或色强度(染料密度)。作为 另外一种选择，利用合适的仪器测量染料密度并为其赋值可以更准确和精确地测定染料的 量和色强度。通常将视觉测定的由个体生物样本产生的染料密度与参考染料密度标度或染 料密度范围进行比较，其中参考染料密度标度或染料密度范围包含与非糖尿病和糖尿病患 者相关的染料密度标度或范围。通常将定量的染料密度与具有类似关联性的参考数值或参 考数值范围进行比较。相对于特定疾病的基准值或参考范围通常从诊断为未患该特定疾病的人群(正 常人群)和诊断为患有该特定疾病的人群中获得。基准值或参考范围可以包括与疾病的不 同阶段相关的数值或测量值。可以将得自样本的结果与这些基准值或参考范围进行比较， 从而检测/诊断或监测疾病。就单独或结合生理属性(下文讨论)的多个生物标记物而 言，基准值和基准值范围也可以与不同形式、起源、原因等的疾病(其形式、起源、原因等响 应不同的治疗)相关联。可以将得自样本的结果与这些基准值或参考范围进行比较，从而 可被告知或指导对个体的治疗方法。除非另外指明，否则术语“基准值”、“基准值范围”等旨在涵盖定量或数值基准群 体测量和定性或视觉基准群体测量，例如染料密度标度、色彩或色调标度等。使用单个生物标记物检测和监测疾病的常规做法已经并将继续作为临床医生及 其服务的患者的有用工具。通常，已知不止一种的生物标记物与某一疾病相关。例如，糖基 化血红蛋白也与糖尿病相关。在采自诊断患有糖尿病的个体的样本中，测定葡萄糖和糖基 化血红蛋白的量可以提供关于个体疾病状态或除测定之外的疗效的更多信息。通过测定多 个生物标记物不仅可以改善对疾病的诊断和监测，而且还可以让临床医生确定个体患病的 可能性或概率或是否处于临床评估不能提供信息的疾病阶段。对多个生物标记物的测定 还可用于指导治疗，让临床医生能够辨别不同形式或阶段的疾�。佣梢圆捎檬实钡闹� 疗措施对个体进行治疗。对多个生物标记物的测定可与个体的一个或多个生理属性结合使 用，以进一步改善预测效果、诊断效果并有助于选择适当的疗法。此类附加的多个生物标记物在本文中称为是一个或多个分子实体。就 sFlt_l:PlGF络合物检测而言，此类分子实体包括但不限于内皮糖蛋白、可溶性内皮糖蛋 白、肌酸酐、C-反应蛋白、尿蛋白、胎盘蛋白13、人绒毛膜促性腺激素或α-胎蛋白和肝酶， 例如天门冬氨酸氨基转移酶、丙氨酸氨基转移酶、碱性磷酸酶和Y-谷氨酰转移酶。如本文 所用，VEGF 可以包括 VEGFm、VEGF145, VEGF165, VEGF165b, VEGF167, VEGF183、VEGF186, VEGF189 或 VEGF2060在本发明的优选实施例中，检测sFlt_l:PlGF络合物，疾病为先兆子痫或先兆子 痫相关疾�。傅贾瘟�、预测、检测或监测均在妊娠期的前15周或妊娠期的前20周或妊娠 期的前30周或更多周进行。可使用数学运算和算法将两个或更多个生物标记物的量转化为一个或多个转换 结果。此类数学运算可以包括计算分子实体测定值与sFlt_l:PlGF络合物测定值的比率 或sFlt-l:PlGF络合物测定值与分子实体测定值的比率。转换结果可以比直接的基于浓度的结果提供更多的信息。将与个体的一个或多个生理属性结合的一种或多种生物标记物的 测定值转化为一个或多个转换结果的数学运算或算法也可用于改善对治疗的指导、对疾病 的预测、检测/诊断和监测。生理属性包括但不限于胎龄、种族、性别、年龄、血压和身体质 量指数。它们可以单独地或以任何组合与一个或多个生物标记物一起使用。介绍数学运算和算法及其在临床诊断中的应用的专利和非专利出版物有很多。 例如，美国专利申请公开No 2006/381104、美国专利申请公开No 2003/700672、美国专 利申请公开No 2003/410572、美国专利申请公开No 2003/634145、美国专利申请公开No 2005/323460、PCT 国际专利公开 No WO 2007/044860、美国专利申请公开 No 2002/330696、 美国专利申请公开No 2002/331127、美国专利申请公开No 1997/912133、美国专利 No6, 306，087、美国专利 No 6，248，063 和美国专利 No 5,769,074。实例IsFlt-1 :P1GF络合物的检测分析在本实例中，描述了用于测定样本中sFlt_l:PlGF络合物的量的免疫测定法，并 示出了 sFlt-l:PlGF络合物作为先兆子痫的诊断指标的效用。利用图1所示的免疫分析形式捕获和检测sFlt_l:PlGF络合物。利用生物素化大 鼠的抗PlGF抗体捕获样本中的sFlt-l:PlGF络合物。通过将生物素结合于包被在反应器 表面上的链霉亲和素，以固定抗PlGF抗体捕获的sFlt-l:PlGF络合物。游离的sFlt_l和 sFlt-1 VEGF络合物未被生物素化抗PlGF捕获剂来捕获，将在洗涤过程中与其他未结合的 物质一起除去。通过使用辣根过氧化物酶(HRP)标记的抗sFlt-Ι抗体通过发光来检测络 合物。由结合的HRP标记的抗sFlt-Ι抗体产生的发光信号与样本中存在的sFlt-l:PlGF 的浓度成正比。由生物素化抗PlGF捕获剂来捕获的任何游离的PlGF都不与HRP标记的抗 sFlt-Ι抗体形成夹心结构，并且也不被测量。免疫分析中使用的材料包括1.生物素试剂pH缓冲含水组合物中浓度为2. 25 μ g/mL的生物素化抗PlGF抗 体。能够结合于sFlt-l:PlGF络合物的生物素化抗PlGF抗体包括但不限于Ortho-Clinical Diagnostic 的小鼠单克隆抗体 0CD-261 和得自 R&D Systems (Minneapolis,Minnesota)的 大鼠单克隆抗体358905及358932。2.酶联物pH缓冲含水组合物中浓度为1. 125 μ g/mL的HRP标记的抗sFlt_l抗 体。不影响将VEGF或PlGF结合于sFlt-Ι的HRP标记的抗sFlt_l抗体包括但不限于 Ortho-Clinical Diagnostic的克隆号为3661-M16和4449-M24的小鼠单克隆抗体以及R&D Systems的单克隆抗体49560。3.通过将纯化的sFlt_l:PlGF络合物加到马血清中制备校准液(其中，如上所 述，“纯化的sFlt-1 :P1GF络合物”表示该络合物已与游离的sFlt-Ι和游离的PlGF分 离)。将得自R&D Systems (目录号264_PG)的10倍摩尔过量的重组人PlGF在20°C下温 育 20min，然后在 2-8°C下用得自 Scios (Scios Inc.，Mountain View, California)的全长 sFlt-l(687个氨基酸)在pH 7. 4的磷酸盐缓冲液(PBS)中过夜温育。采用尺寸排阻色谱 法将sFlt-1 :P1GF络合物在通过含0. 25M乙醇胺的磷酸盐缓冲液(pH8. 5)平衡的Superdex 200柱上与游离的PlGF分离。将包含络合物的镏分合并，并使用离心浓缩装置浓缩。然后 将浓缩的合并络合物透析到PH7. 4的PBS中。
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在马血清(GIBC0，目录号26050)中稀释纯化的sFlt_l PlGF络合物得到不同的浓 度，以提供校准液CRl至CR10，这一系列校准液的sFlt-l:PlGF络合物浓度范围在0. 0和 25，000pg/mL 之间。4.反应器为链霉亲和素包被的微孔(SAC孔)。免疫分析方案免疫分析方案如下将样本(80 μ L)与80 μ L生物素试剂在SAC孔中结合，并将混合物在37°C下温 育21分钟。温育之后使用VITROS ECi通用洗涤试剂进行洗涤。洗涤步骤之后，将酶联物 (160 μ L)加入SAC孔，并在37°C下温育21分钟。温育之后使用VITROS ECi通用洗涤试剂 进行二次洗涤。然后加入包含发光试剂的VITROS ECi信号试剂并温育5分钟。温育之后 采集发光信号。评估sFlt_l:PlGF络合物测定的分析和临床效果。结果如表1_6和图2_4所示。 在表1中示出了使用校准液(包含sFlt-l:PlGF络合物)获得的信号响应，以分析仪光单位 (ALU)表示。表1的数据以剂量反应曲线在图2中示出。使用包含不同浓度的游离sFlt-1 或游离PlGF (而非sFlt-1 :P1GF络合物)的样本来代替检测分析中包含sFlt_l :P1GF络合 物的样本，进行交叉反应性研究，从而提供证明检测分析中只检测到sFlt-l:PlGF络合物 (而非游离sFlt-Ι或游离P1GF)的证据。研究结果在表2和表3中给出，从表中数据可以 看出，游离的sFlt-Ι和游离的PlGF并未表现出明显的响应。使用上述检测分析法，对得自诊断为患有先兆子痫或未患先兆子痫(正常)的妊 娠期中三个月或末三个月孕妇的血清样本进行sFlt-l:PlGF络合物的分析。结果汇总于表 4中。图3示出了结果的点图，从图中可以看出，存在于正常群体血清样本中的sFlt-l:PlGF 络合物浓度通常低于并明显有别于来自诊断为患有先兆子痫的群体的血清样本中的浓 度。对数据进行接受者操作特性(ROC)分析。ROC曲线下面积(表5)为0.783，这证明 sFlt-l:PlGF络合物是检测/诊断先兆子痫的可用生物标记物。对于每个样本，计算了样本中sFlt_l:PlGF络合物的含量与样本中游离PlGF的含 量的比率，并与使用游离PlGF分析测定的游离PlGF的量进行比较。结果在表4中给出。 每个样本的比率(sFlt-l:PlGF络合物/游离P1GF)与临床诊断的关系点图在图4中示出。 正常群体样本的计算比率通常低于并明显有别于先兆子痫群体样本的计算比率。ROC曲线 下面积(表6)为0. 889，这证明sFlt-l:PlGF络合物/游离PlGF的比率也是先兆子痫的可 用标记物。实例II使用抗sFlt-Ι捕获剂进行的sFlt-1 :P1GF络合物ELISA检测本实例中描述了 ELISA方法在测定sFlt_l:PlGF络合物时的用途。在该检测分析 法中，使用抗sFlt-Ι抗体捕获游离的sFlt-Ι和sFlt-1 :P1GF络合物，并使用标记的抗PlGF 抗体检测sFlt-1 :P1GF络合物。板包被将Costar 96孔微量滴定高结合力板用含1 μ g/mL抗sFlt_l抗体49560 (R&D Systems)的IOmM磷酸盐与2mM EDTA的溶液(pH7. 0)包被，每孔100 μ L，然后在25°C下温 育18小时。用含0. 05% TWEEN-20的PBS将孔洗涤一次，然后加入290 μ L/孔的封闭缓冲液(1%牛血清白蛋白的磷酸盐缓冲液溶液，PH 7.0)，接着在25°C下温育1小时。吸出孔内 的液体并在低湿度恒温箱中干燥4小时，然后密封在气密袋中待用。ELISA 方法将一系列包含恒定量的重组sFlt-Ι (纯化的重组sFlt-1，Scios ；在昆虫细胞中 表达；对应于687个氨基酸的全长可溶fms样酪氨酸激酶1)和变化量的重组P1GF(149 个氨基酸；PlGF-I ；在大肠杆菌中表达；R&DSystems，目录号264_PG/CF)的样本一起在样 本稀释液(含0. 05% TWEEN-20的酪蛋白PBS缓冲系统封闭液，Pierce)中温育，以形成 sFlt-l:PlGF络合物。将100 μ L的各预温育样本加入微量滴定孔。将100 μ L的样本稀释 液加入至少一个孔中，以作为对照。将孔在37°C下振荡温育15分钟。用洗涤缓冲液(含 0. 05% TWEEN-20的PBS)将板洗涤6次，除去未结合的物质。如表7所示，加入100 μ L/孔 的特异性HRP标记的抗体(含0. 05% TWEEN-20的1 μ g/mL酪蛋白PBS缓冲系统封闭液)， 分别测量抗sFlt-Ι抗体包被板中的总sFlt-Ι、游离sFlt-Ι和sFlt_l :P1GF络合物。加入 各检测抗体后，将板在37°C下振荡温育15分钟。将板用洗涤缓冲液洗涤6次。向每个孔 内加入IOOyL的邻苯二胺(OPD)底物试剂，并在25°C下于黑暗中温育30分钟。向每个 孔内加入25 μ L终止液，获取492nm波长上的吸光度。(HRP底物、OPD试剂和终止液得自 Ortho-ClinicalDiagnostics, Inc. (Raritan, New Jersey, USA))。ELISA 结果 二 总 sFlt-1表8给出了每个样本在492nm下获得的吸光度。HRP标记的抗sFlt_l抗体 M14 (Ortho-Clinical Diagnostics)既与游离的 sFlt-Ι 结合也与 sFlt-Ι PlGF 络合物 结合，因而检测到游离的sFlt-Ι和sFlt-l:PlGF络合物中的sFlt_l。如表8所示，总 sFlt-l(游离的sFlt-Ι和sFlt-l:PlGF络合物的观察到的信号总和)的信号响应为恒定 的，与PlGF浓度无关。ELISA 结果-游离的 sFlt-1服？标记的抗8 1丨_1抗体49566(1 &0 Systems)结合于游离的sFlt_l，但不结合于 sFlt-l:PlGF络合物，因而只检测到游离的SFlt-I0当PlGF浓度从0增至2000pg/mL时， 观察到的信号响应降低(表8)。这是意料之中的因为当PlGF浓度增加时，将形成更多的 sFlt-l:PlGF络合物，而游离的sFlt-Ι的浓度则降低。ELISA 结果 _sFlt_l PlGF 络合物HRP标记的抗PlGF抗体358905 (R&D Systems)结合于P1GF，因而只检测到在 sFlt-1 :P1GF络合物中结合的sFlt-Ι。表8示出了当PlGF浓度从0增至2000pg/mL时信 号响应增加。表8提供的这些结果表明，通过利用抗sFlt-Ι抗体捕获包含sFlt-Ι的分子种类 的ELISA形式，可以测量总sFlt-Ι、游离的sFlt-Ι和sFlt_l :P1GF络合物。通过上述方法捕获sFlt-Ι和检测P1GF，可以测定样本中sFlt_l :P1GF络合物的存 在或量，并且可以利用如此获得的测量结果(单独地或结合附加的化学和/或物理生物标 记物)作为先兆子痫的诊断指标。使用抗PlGF捕获剂进行sFlt-1 :P1GF络合物的ELISA检测在另一 ELISA方法中，用抗PlGF抗体捕获游离的PlGF和sFlt_l:PlGF络合物。用 标记的抗sFlt-Ι抗体检测sFlt-l:PlGF络合物。
板的包被将Costar 96孔微量滴定高结合力板用含0. 8 μ g/mL抗PlGF抗体358932 (R&D Systems)的IOmM磷酸盐与2mM EDTA的溶液(ρΗ7. 0)包被，每孔100 μ L，然后在25°C下温 育18小时。用含0. 05% TWEEN-20的PBS将孔洗涤一次，然后加入290 μ L/孔的封闭缓冲 液(1%牛血清白蛋白的磷酸盐缓冲液溶液，pH 7.0)，接着在25°C下温育1小时。吸出孔内 的液体并在低湿度恒温箱中干燥4小时，然后密封在气密袋中待用。ELISA 方法将表9中所示的一系列包含恒定量的重组PlGF (序列标识号2 ；在大肠杆菌中表 达；R&D Systems,目录号264_PG/CF)和变化量的重组sFlt_l (687个氨基酸的全长可溶 fms样酪氨酸激酶；在昆虫细胞中表达；Sci0s，lnc.)的样本一起在样本稀释液(含0.05% TWEEN-20的酪蛋白PBS缓冲系统封闭液，Pierce)中温育，以形成sFlt_l:PlGF络合物；将 混合物加入包被孔中，并将板在37°C下振荡温育15分钟。用温和的含去垢剂缓冲液洗涤 滴定板，以除去未结合的物质。按表7所示，加入100 μ L/孔的特异性HRP标记抗体(含 0. 05% TWEEN-20的1 μ g/mL酪蛋白PBS缓冲系统封闭液，Pierce)，分别测量抗PlGF抗体 包被板中的总P1GF、游离PlGF和sFlt-l:PlGF络合物。加入每种检测抗体后，将板在37°C 下振荡温育15分钟。将板用洗涤缓冲液洗涤6次。加入100 μ L/孔的OPD HRP底物试剂并 在25°C下于黑暗中温育30分钟之后，进行比色反应。加入25 μ L/孔的终止液并获取492nm 波长上的吸光度。(HRP底物、邻苯二胺试剂和终止液得自Ortho-Clinical Diagnostics, Inc. (Raritan, New Jersey, USA))。ELISA 结果-总 PlGF表9列出了各特异性反应后每个样本在492nm波长上的吸光度。HRP标记的抗 PlGF抗体358905 (R&D Systems)既结合于游离的PlGF也结合于sFlt_l PlGF络合物，因而 检测到游离PlGF和sFlt-1 :P1GF络合物中的PlGF。表9中的总PlGF响应列示出了 PlGF 浓度为2000pg/mL的样本的响应保持恒定，而不论sFlt-Ι浓度为多少。ELISA 结果-游离的 PlGFHRP标记的抗PlGF抗体37203 (R&D Systems)结合于游离的P1GF，但不结合于 sFlt-l:PlGF络合物，因而只检测到游离的P1GF。表9显示，当sFlt-Ι浓度从0增至2000pg/ mL时，信号响应降低。当游离的PlGF结合于sFlt-Ι时，游离PlGF分子的浓度应降低，而 sFlt-Ι PlGF络合物的浓度应增加。ELISA 结果-sFlt-1: PlGF 络合物HRP 标记的抗 sFlt-Ι 抗体 M14 (Ortho-Clinical Diagnostics)结合于 sFlt-1 并 结合于sFlt-1 :P1GF络合物，因而只有作为sFlt-1 :P1GF络合物捕获的PlGF被检测到。表 9显示当sFlt-Ι浓度从0增至2000pg/mL时信号响应增加。表9中所列的结果表明，通过用抗PlGF抗体捕获所有PlGF种类并独立地检测每 项指标的ELISA形式，可以测量总P1GF、游离PlGF和sFlt_l:PlGF络合物。当将浓度渐增 的sFlt-Ι加入浓度恒定的PlGF中时，游离PlGF的响应降低，而sFlt_l :P1GF络合物的响 应增加，这可以通过492nm波长上的吸光度变化来反映。通过上述方法捕获PlGF和检测sFlt-Ι，可以测定样本中是否存在sFlt_l PlGF络 合物及其量，并且可以利用如此获得的测量结果(单独地或结合附加的化学和/或物理生物标记物)作为先兆子痫的诊断指标。实例IIIsFlt_l:PlGF 络合物、总 sFlt-Ι、游离 PlGF胎龄第27-37周总sFlt-Ι和游离PlGF的检测分析总sFlt-Ι和游离PlGF的检测分析使用目录号分别为DVR100B和DPGOO的R&D Systems Quantikine 试剂盒进行。按照这些产品的R&DSystems包装说明书中介绍的方案 进行检测分析。sFlt-1 :P1GF络合物检测分析如实例I中那样，利用图1所示的免疫分析形式捕获和检测sFlt_l:PlGF络合物。免疫分析中使用的材料包括1.生物素试剂pH缓冲含水组合物中浓度为6. Oug/mL的生物素化抗PlGF抗体 (Ortho Clinical Diagnostics 小鼠单克隆抗体 0CD-261)。能够结合于 sFlt-1 :P1GF 络合 物的其他生物素化抗PlGF抗体得自R&DSystems (Minneapolis, Minnesota)。2.酶联物pH缓冲含水组合物中浓度为4. 5μ g/mL的HRP标记的抗sFlt_l抗 体。不影响将VEGF或PlGF结合于sFlt-Ι的HRP标记的抗sFlt_l抗体包括但不限于 Ortho-Clinical Diagnostic的克隆号为3661-M16和4449-M24的小鼠单克隆抗体以及R&D Systems的单克隆抗体49560。3.将纯化的sFlt_l:PlGF络合物加入到马血清中制备校准液(其中，如上所述， “纯化的sFlt-Ι PlGF络合物”表示该络合物已与游离的sFlt-Ι和游离的PlGF分离)。将得 自R&D systems的10倍摩尔过量的重组人P1GF(目录号264_PG)在20°C下温育20min，然 后在 2-8°C下用全长 sFlt-l(687 个氨基酸)(Scios Inc. ,Mountain View, CaliforniaUSA) 在pH 7. 4的PBS缓冲液中过夜温育。采用尺寸排阻色谱法将sFlt-1:PlGF络合物在通过 含0. 25M乙醇胺的磷酸盐缓冲液(pH8. 5)平衡的Superdex 200柱上与游离的PlGF分离。 将包含络合物的镏分合并，并使用离心浓缩装置浓缩。然后将浓缩的合并络合物透析到PH 7. 4 的 PBS 中。在马血清(GIBC0，目录号26050)中以不同的浓度稀释纯化的sFlt_l :P1GF络合 物，以提供校准液CRl至CR10，这一系列校准液的sFlt-l:PlGF络合物浓度范围在0. 0和 25，000pg/mL 之间。4.反应器为用链霉亲和素包被的微孔(SAC孔)。免疫分析方案免疫分析方案如下将样本(80 μ L)与35 μ L生物素试剂和35 μ L酶联物在SAC孔中结合，并将混合 物在37°C下温育21分钟。温育后使用VITROS ECi通用洗涤试剂进行洗涤。在洗涤步骤后 加入VITROS ECi信号试剂并温育5分钟。温育后采集发光信号。按照R&D Systems的ELISA检测分析方案双份地分析每个患者样本的P1GF-1 和sFlt-Ι。使用如上所述的sFlt-l:PlGF-l络合物分析程序对每个患者样本进行 sFlt-1:PlGF-I络合物的单个分析。每个患者样本的R&DSystems双份分析结果的平均值 和sFlt-l:PlGF-l络合物分析结果在表10的上部给出。采集样本时的胎龄在表10的第2列给出。按照美国妇产科学会(ACOG)指南在接近采集样本时确定的诊断结果见第3列。 ROC曲线下面积测定结果在表10的底部给出，具体为=PlGF-I分析(0. 8796)、sFLt-Ι分析 (0. 7994)、sFlt-l: PlGF 络合物分析(0. 7654)、sFlt_l/PlGF 比率(0. 8519)和 sFlt_l:PlGF 络合物/PlGF比率(0.8642)。这些数据表明，对于27至37. 4周的胎龄，sFlt_l PlGF络合 物分析单独地或作为与游离PlGF分析的比率，在其临床效果方面与测量总sFlt-Ι的分析 的效果相当。实例IVsFlt_l:PlGF 络合物、sFlt_l、PlGF胎龄第13-21周如本实例所证明的那样，相比妊娠早期总sFlt-Ι或总sFlt-Ι与游离PlGF的比 率，对sFlt-Ι 血管生成因子络合物的存在或其量的评估对于先兆子痫的诊断和预测显示 出优越的临床效用。类似地，与游离P1GF、总sFlt-Ι或总sFlt-Ι与游离PlGF的比率相比， sFlt-l:PlGF络合物与游离PlGF的比率对于先兆子痫的诊断和预测具有更优越的临床效用。像实例III中一样，按照R&D Systems ELISA检测分析方案对每个患者样本双 份地进行游离PlGF和总sFlt-Ι的测定，并使用络合物分析程序对每个患者样本进行 sFlt-l:PlGF络合物的单个分析。结果在表11中示出。采集样本时的胎龄在表11的第2 列给出。按照ACOG指南进行诊断，并在ICD-9编码标号的基础上给出轻度和重度先兆子痫 的赋值。这些数据在表11的第3和4列中列出。采集之后，将血样存档以备日后分析；在 第21周与产后之间进行诊断。测定ROC曲线下面积，结果在表12中给出。最上面的数据图(轻度或重度PE)中 给出的结果基于妊娠期第13-21周采集的94个患者样本。轻度和重度先兆子痫的诊断结 果在ROC分析中组合为先兆子痫阳性。ROC曲线下面积的计算结果如下游离PlGF分析 (0. 5745)、总 sFlt-Ι 分析(0. 5029)、sFlt_l:PlGF 络合物分析(0. 6331)、总 sFlt-Ι/ 游离 PlGF比率(0.5396)和sFlt-1 :P1GF络合物/游离PlGF比率(0.6392)。这些结果表明，总 sFlt-Ι、游离PlGF和总sFlt-Ι/游离PlGF比率不适用于在妊娠早期预测或检测先兆子痫。 然而，sFlt-l:PlGF络合物和sFlt-1:PlGF络合物/游离PlGF的比率结果表明，它们能够 在临床上辨别随后发展到轻度或重度先兆子痫的受试者与未发展下去的受试者。中间数据图(重度PE，轻度PE=正常)给出的结果基于相同的94个患者样本； 然而，在ROC分析过程中，轻度先兆子痫的诊断结果重新划分为正常。ROC曲线下面积如下 游离 PlGF 分析(0. 7142)、总 sFlt-Ι 分析(0. 5622)、sFlt_l PlGF 络合物分析(0. 6942)、总 sFlt-Ι/ 游离 PlGF 比率(0. 6771)和 sFlt_l:PlGF 络合物 / 游离 PlGF 比率(0. 7445)。这 些结果表明，与总sFlt-Ι相比，在预测先兆子痫发作方面sFlt-l:PlGF络合物单独地或与 游离PlGF结合作为比率形式具有更优越的临床能力。最下面的数据图中提供的ROC分析结果仅基于妊娠期第16-21周采集的那些患 者样本，这些患者被诊断为正常(分析中将轻度先兆子痫划为正常)，或者被诊断为患有重 度先兆子痫。ROC曲线下面积如下游离PlGF分析(0. 7394)、总sFlt-Ι分析(0. 5455)、 sFlt-l:PlGF 络合物分析(0. 7636)、总 sFlt-Ι/游离 PlGF 比率(0.6848)和 sFlt_l:PlGF 络合物/游离PlGF比率(0.8707)。结果表明，与总sFlt_l相比，在预测先兆子痫发作方面
21sFlt-1 :P1GF络合物单独地或作为比率具有更优越的效果。虽然已经示出了本发明的具体实施例，但是本发明并不局限于此，因为本领域的 技术人员可以对这些实施例进行修改，尤其是按照上述教导进行修改。在不脱离本发明精 神的情况下，可以在本发明的上述公开范围内进行合理的变型和修改。本发明引用的所有文档(包括已公布的专利申请、授权专利和非专利出版物)的 主题和这些文档中引用的所有参考文献的主题均以引用方式并入本文中。^t 1剂量_反应结果 彪游离sFlt-Ι的交叉反应件
游离PlGF的交叉反应件 患者结果sFlt-l:PlGF络合物、游离PlGF和sFlt-Ι PlGF络合物/游离PlGF比 ^ 5ROC 分析ff =曲线下面积，SE =标准误差，ρ =概率 戲ROC 分析ff =曲线下面积，SE =标准误差，ρ =概率
表7 魁
表9 表 10sFlt_l:PlGF 络合物、sFlt-Ι、游离 PlGF 和比率胎龄第27-37周 sFlt-1:PlGF-I 络合物、sFlt-Ι、游离 PlGF 和比率胎龄第13-21周(接下三页) 表 12RQC 分析 轻度或重度PE与无PE (采集时的胎龄13-21周)
权利要求
一种测定sFlt 1:PlGF络合物的存在或量的方法，所述方法包括a)用结合于PlGF的捕获剂来捕获所述络合物，并用结合于sFlt 1和sFlt 1:PlGF络合物中的一者或两者的检测剂来检测所述络合物；或b)用结合于sFlt 1的捕获剂来捕获所述络合物，并用结合于PlGF和sFlt 1:PlGF络合物中的一者或两者的检测剂来检测所述络合物；或c)用结合于sFlt 1:PlGF络合物的捕获剂来捕获所述络合物，并用结合于sFlt 1:PlGF络合物的检测剂来检测所述络合物，其中捕获剂和检测剂能够同时结合于所述络合物；或d)用结合于sFlt 1:PlGF络合物的捕获剂来捕获所述络合物，并用结合于PlGF和sFlt 1中的一者或两者的检测剂来检测所述络合物。
2.根据权利要求1所述的方法，其中PlGF为PlGF-I、P1GF_2或P1GF-3。
3.根据权利要求1所述的方法，其中所述捕获剂被固定在支承物上或能够被固定在支 承物上。
4.根据权利要求3所述的方法，其中所述支承物为试管的表面、微孔、微量滴定孔、膜、 板、珠、微粒或片。
5.根据权利要求3所述的方法，其中捕获剂连接于生物素。
6.根据权利要求5所述的方法，其中连接于生物素的捕获剂通过结合于亲和素、链霉 亲和素或其他生物素结合剂而被固定。
7.根据权利要求1所述的方法，其中捕获剂和检测剂中的一者或两者为多克隆抗体。
8.根据权利要求1所述的方法，其中捕获剂和检测剂中的一者或两者为单克隆抗体。
9.根据权利要求1所述的方法，其中捕获剂和检测剂中的一者或两者为单克隆和多克 隆抗体的组合。
10.用于指导治疗或预测、检测或监测个体中的血管、血管相关、肿瘤、肿瘤相关、心脏、 心脏相关、先兆子痫或先兆子痫相关疾病的方法，所述方法包括a)测定采自个体的样本中sFlt-l:PlGF络合物的存在或量；和b)i)将所述sFlt-1:PlGF测定结果与一个或多个基准值进行比较；或 )用一个或多个数学运算或一个或多个算法将所述sFlt-l:PlGF络合物测定结果转 化为一个或多个转换结果，并将所述sFlt-l:PlGF络合物转换结果与一个或多个基准值进 行比较；从而指导治疗或预测、检测或监测所述疾病。
11.根据权利要求10所述的方法，还包括a)测定所述样品中一种或多种分子实体的存在或量；和b)i)将所述分子实体测定结果和所述sFlt-1:PlGF络合物测定结果与所述一个或多 个基准值进行比较；或 )用一个或多个数学运算或一个或多个算法将所述分子实体测定结果和所述 sFlt-l:PlGF络合物测定结果转化为一个或多个转换结果，并将所述分子实体转换结果和 所述sFlt-l:PlGF转换结果与所述一个或多个基准值进行比较。
12.根据权利要求11所述的方法，还包括a)测定所述个体的一个或多个生理属性的值；和b)i)将所述生理属性测定值和所述分子实体测定结果以及所述sFlt-l:PlGF络合物2测定结果与所述一个或多个基准值进行比较；或 )用一个或多个数学运算或一个或多个算法将所述生理属性测定值和所述分子实体 测定结果以及所述sFlt-l:PlGF络合物测定结果转化为一个或多个转换结果，并将所述生 理属性的值转换结果和所述分子实体转换结果以及所述sFlt-l:PlGF转换结果与所述一 个或多个基准值进行比较。
13.根据权利要求10所述的方法，还包括a)测定所述个体的一个或多个生理属性的值；和b)i)将所述生理属性测定值和所述sFlt-l:PlGF络合物测定结果与所述一个或多个 基准值进行比较；或 )用一个或多个数学运算或一个或多个算法将所述生理属性测定值和所述 sFlt-l:PlGF络合物测定结果转化为一个或多个转换结果，并将所述生理属性转换结果和 所述sFlt-l:PlGF转换结果与所述一个或多个基准值进行比较。
14.根据权利要求10所述的方法，其中PlGF为P1GF-1、P1GF-2或P1GF-3。
15.根据权利要求10所述的方法，其中所述疾病为先兆子痫或先兆子痫相关疾�。� 且指导治疗、预测、检测或监测在妊娠期前15周内或妊娠期前20周内或妊娠期前30周或 更多周内进行。
16.根据权利要求11所述的方法，其中所述一个或多个分子实体选自游离P1GF、游离 sFlt-Ι、游离VEGF、sFlt-1:VEGF络合物、内皮糖蛋白、可溶性内皮糖蛋白、肌酸酐、c_反应 蛋白、肝酶、尿蛋白、胎盘蛋白13、人绒毛膜促性腺激素、α-胎蛋白和血管紧张素II-I型受 体的自身抗体。
17.根据权利要求16 所述的方法，其中 VEGF 为 VEGF121、VEGF145, VEGF165, VEGF165b、 VEGF167, VEGF183、VEGF186, VEGF189 或 VEGF2060
18.根据权利要求11所述的方法，其中所述一个或多个数学运算包括计算所述分子实 体测定值与所述sFlt-1: PlGF络合物测定值的比率或所述sFlt-l:PlGF络合物测定值与所 述分子实体测定值的比率。
19.根据权利要求12所述的方法，其中所述一个或多个生理属性选自胎龄、种族、年 龄、性别、血压和身体质量指数。
20.根据权利要求13所述的方法，其中所述一个或多个生理属性选自胎龄、种族、年 龄、性别、血压和身体质量指数。
21.用于测定sFlt-l:PlGF络合物的存在或量的组合物，包含a)结合于PlGF的捕获剂和结合于sFlt-1和sFlt_lPlGF络合物中的一者或两者的检 测剂；或b)结合于sFlt-Ι的捕获剂和结合于PlGF和sFlt-1:PlGF络合物中的一者或两者的检 测剂；或c)结合于sFlt-l:PlGF络合物的捕获剂和结合于sFlt-l:PlGF络合物的检测剂，其中 捕获剂和检测剂能够同时结合于所述络合物；或d)结合于sFlt-1:PlGF络合物的捕获剂和结合于PlGF和sFlt_l中的一者或两者的检 测剂。
22.根据权利要求21所述的组合物，其中PlGF为P1GF-1、P1GF-2或P1GF-3。
23.根据权利要求21所述的组合物，其中捕获剂和检测剂中的一者或两者为多克隆抗体。
24.根据权利要求21所述的组合物，其中捕获剂和检测剂中的一者或两者为单克隆抗体。
25.根据权利要求21所述的组合物，其中捕获剂和检测剂中的一者或两者为单克隆和 多克隆抗体的组合。
26.包含纯化形式的sFlt-l:PlGF络合物的组合物。
27.根据权利要求26所述的组合物，其中PlGF为P1GF-1、P1GF-2或P1GF-3。
28.根据权利要求26所述的组合物，其中所述sFlt-l:PlGF络合物的sFlt_l和PlGF 中的一者或两者为天然的。
29.根据权利要求26所述的组合物，其中所述sFlt-l:PlGF络合物的sFlt_l和PlGF 中的一者或两者为重组的。
30.根据权利要求26所述的组合物，其中所述纯化形式的sFlt-1:P1GF络合物利用下 列方法获得尺寸排阻色谱法、疏水色谱法、离子交换色谱法、离心法、分子筛分法、金属离 子交换色谱法、亲和色谱法、电泳法或配体交换色谱法。
31.根据权利要求26所述的组合物，其中sFlt-Ι和PlGF彼此共价结合。
32.根据权利要求26所述的组合物，所述组合物用于校准或验证测定sFlt-1:P1GF络 合物的存在或量的检测分析法的性能。
全文摘要
本发明提供了用于测定包含第一分子实体和第二分子实体的络合物的存在或量的方法，所述络合物优选地为sFlt-1:PlGF络合物。对所述络合物的存在或量的测定结果可用于预测、检测、监测或指导治疗例如下列疾病的方法中血管疾病、血管相关疾病、心脏疾病、心脏相关疾病、肿瘤、肿瘤相关疾病、先兆子痫和先兆子痫相关疾病。测定sFlt-1血管生成因子络合物对于在妊娠早期以及临床评估可能无法提供有效信息的疾病阶段预测和检测先兆子痫尤为有用。
文档编号G01N33/00GK101918839SQ200980101754
公开日2010年12月15日 申请日期2009年1月7日 优先权日2008年1月7日
发明者B·�？ɡ�, D·拜尔恩, E·斯卡利斯, G·巴什里安斯, H·莱恩-布朗, J·郑, K·杨, S·杰克逊, S·格鲁尔瓦 申请人:奥索临床诊断有限公司
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