专利名称：一种绵羊抗苦马豆素抗体的elisa检测方法及试剂盒的制作方法
技术领域：
本发明属于免疫学技术领域，涉及一种绵羊抗苦马豆素抗体的ELISA检测方法及试剂盒。
背景技术：
疯草(Iocoweed)是豆科(Leguminosae)棘豆属(Oxytropis)和黄苗属(Astragalas)有毒植物的统称，由此而引起的中毒病称为疯草中毒(Locosim)或疯草病(Locodisease)。我国疯草主要分布于内蒙古、宁夏、甘肃、陕西、青海、新疆、西藏等省区。分布面积已超过1100万hm2,约占全国草场总面积的2. 8%,占西部草场面积的3. 3%,且每年以3. 5%的速度蔓延。疯草已成为我国西南、西北牧区�：Σ菰竽烈悼沙中⒄沟闹饕静�。苦马豆素(Swainsonine, SW)是疯草的主要毒性成分之一,对疯草中毒病的发病机理和防治有重要意义。新疆是我国五大草原畜牧业省份之一，天然草地总面积为5596. 16X 104hm2,其中可利用面积4800. 68X 104hm2，是已垦农地的10. 4倍，林地的18倍。然而，由于“超载过牧”等原因，现已引起疯草等有毒植物的广泛蔓延，优质牧草严重退化，造成大量放牧家畜中毒，其中阿克苏地区每年中毒家畜在5% 10%，严重时可达50%，不利于新疆畜牧业的可持续发展。疯草属于豆科植物，除含有疯草毒素外，还含有丰富的营养物质。其中黄花棘豆的粗蛋白含量高达20%，超过“饲料之王”的苜蓿，小花棘豆粗蛋白、钙、磷含量及必需氨基酸组成接近于优质苜蓿，对我国而言，将西部草原30%以上的生长茂盛的疯草等有毒植物变成可利用的优质牧草，草原畜牧业将增加近一倍的饲草资源。目前多采用免疫学方法使放牧家畜获得抗苦马豆素抗体，以期在家畜采食疯草时获得保护。其免疫效果的确定有赖于抗体的准确检测，ELISA法因具有快速、敏感、准确等优点而得到广泛应用。本课题组以新疆和田羊为试验动物，通过制备苦马豆素人工抗原，筛选包被抗原，制备阳性血清和阴性血清，制备HRP-兔抗羊酶标抗体，建立测定方法，从而得到检测绵羊血清抗苦马豆素抗体的ELISA检测试剂盒，为新疆放牧羊安全利用疯草提供基础。而到目前为止，并未有绵羊抗苦马豆素抗体的ELISA检测试剂盒的研究报道和专利申请。
发明内容
为了解决上述技术问题，本发明提供一种设备简单，操作方便的绵羊抗苦马豆素抗体的ELISA检测方法及试剂盒。通过该方法的实施，达到对绵羊免疫效果的快速、敏感、准确的判断，操作方法简单易行，适用于科研院所和基层畜牧系统。具体技术方案为一种绵羊抗苦马豆素抗体的ELISA检测方法，采用间接ELISA法检测绵羊血清抗苦马豆素抗体，包括以下步骤
(I)包被使用抗原包被缓冲液将苦马豆素人工抗原稀释到工作浓度，加入96孔酶标板，每孔IOOy L，4°C过夜；(2)封闭将孔内抗原液弃去，加入PBST洗涤液，每孔200 ilL，振荡30s后弃去孔内液体，拍干。PBST洗涤液的配制方法十二水磷酸氢二钠2. 9g，无水磷酸氢二钾0. 2g，氯化钠8. Og,氯化钾0. 2g，吐温-200. 5mL,溶解于IOOOmL蒸馏水；重复洗涤3次后，每孔加入20g/L明胶溶液，将酶标板置于37°C培养箱内培养Ih进行封闭；(3)添加待检血清及阳性、阴性血清弃去孔内明胶溶液,洗涤3次后，向每孔加入100 u L工作浓度的待检血清、阳性血清和阴性血清，并以PBS溶液为空白对照，将酶标板置于37 °C培养箱内培养Ih ；(4)添加酶标二抗弃去孔内血清，洗涤3次后，向每孔加入IOOii L工作浓度的HRP-兔抗羊酶标抗体，将酶标板置于37°C培养箱内培养Ih ；(5)添加底物溶液弃去孔内溶液，洗涤3次后，向每孔加入IOOii L底物溶液，底物使用四甲基联苯胺，即TMB，配置方法为底物显色A液无水醋酸钠13. 6g，柠檬酸1. 6g，30%双氧水0. 3ml，用蒸馏水定容于500mL ;底物显色B液乙二胺四乙酸二钠0. 2g，柠檬酸
0.95g，甘油50mL，0. 15g TMB,3mL DMS0，用蒸馏水定容于500mL，使用时AB液等量混合，将酶标板置于37°C培养箱内培养30min ；(6)终止将酶标板拿出培养箱后，立即向每孔加入2mol/L H2SO4溶液终止反应，立即使用酶标仪测定OD■值，以待检血清OD■值⑵和阴性血清OD■值(N)的比值(P/N)彡2.1判定样品为阳性。
进一步优选的技术方案中，所述的步骤(I)中，包被抗原选择为SW-0VA，工作浓度为10 U g/mL，抗原包被缓冲液为pH9. 6的碳酸盐缓冲液，配置方法为2. 93g碳酸氢钠和
1.95g碳酸钠溶解于IOOOmL蒸馏水。进一步优选的技术方案中，所述的步骤(3)中，血清稀释度为1: 80，稀释液选用包被缓冲液。进一步优选的技术方案中，所述的步骤(4)中，酶标二抗稀释度为1: 1600，稀释液选用包被缓冲液。进一步优选的技术方案中，所述的步骤(5)中，底物更换为四甲基联苯胺二盐酸，即TMB 2Hcl，在底物显色B液中弃去DMS0，减少了有机溶剂对试验的干扰。一种检测绵羊抗苦马豆素抗体的ELISA检测试剂盒，其中包括已包被完全的96孔酶标板(包被抗原为10 u g/mL的SW-0VA)、阳性血清(抗体效价29 24)、阴性血清、HRP-兔抗羊酶标抗体PBS溶液、PBST洗涤液、底物显色A液、底物显色B液、终止液。本发明的有益效果(I)本发明建立了绵羊血清抗苦马豆素抗体检测方法，优化了检测条件，所需设备简单，操作方便。(2)本发明中的阳性血清抗体效价较高，可检测的范围较大。(3)本发明中的检测方法变异系数小于15%，有较好的精密性。(4)本发明中的试剂盒可在4°C保存6个月，有较好的稳定性。
图1为活性酯的合成反应式；图2为N-羧甲基苦马豆素的合成反应式；图3为SW-OVA的合成反应式；图4为SW-BSA的合成反应式。
具体实施例方式下面结合附图和具体实施方式
对本发明的方法作进一步详细地说明。检测试验中所需的包被抗原、阳性血清和酶标抗体制备方法如下(I)包被抗原的制备首先将溴乙酸与N-羟基琥珀酰亚胺反应成活性酯，活性酯再与苦马豆素合成为N-羧甲基苦马豆素，然后与N-羧甲基苦马豆素与OVA缩合，透析后冷冻干燥即为SW-0VA，其化学反应式如图1-图3所示。(2)阳性血清的制备使用苦马豆素人工抗原SW-BSA免疫和田羊，对免疫羊使用弗氏完全佐剂(FAC)进行基础免疫，IOd后进行首免，使用FAC和生理盐水的混合液(体积比1:1)充分乳化制备的SW-BSA ;第一次和第二次加强免疫用弗氏不完全佐剂(FAI)和生理盐水的混合液(体积比1:1)乳化；第三次加强免疫使用生理盐水溶解SW-BSA，第三次加强免疫IOd后，所有试验和田羊颈静脉采血，分离血清，即得到抗苦马豆素阳性血清；(3)兔抗羊抗体的制备将和田羊抗苦马豆素血清采用硫酸铵沉淀法制备抗苦马豆素抗体，通过DEAE纯化，流水透析后冻干，即得到和田羊抗苦马豆素抗体，将和田羊抗苦马豆素抗体与FAIl I (m/v)混合，完全乳化后对家兔进行接种，每IOd免疫一次，免疫剂量分别为2mg、4mg、8mg、10mg、15mg/只，共免疫5次。免疫结束后对试验兔耳缘静脉采血，分离血清，饱和硫酸铵沉淀，DEAE纯化，流水透析后冻干，即得到兔抗羊抗体；(4)HRP标记兔抗羊抗体的制备使用改良过碘酸钠法，取HRP 50mg溶于5mL去离子水,加入新配制的0. 06mol/L过碘酸钠水溶液5mL,于4°C静置反应30min,取出后加入0. 16mol/L乙二醇水溶液5mL,室温放置,反应30min,加入上步制备的兔抗羊抗体50mg,混匀后透析过夜，透析液为0. 05mol/L pH9. 6碳酸盐缓冲液,然后加入5mg硼氢化钠，于4°C静置反应2h，然后饱和硫酸铵沉淀，沉淀物以0. 02mol/L pH7. 4PBS液溶解后透析过夜，透析液为0. 02mol/LpH7. 4PBS液，次日取出离心，除去不溶物，即得到HRP标记兔抗羊抗体。一种检测绵羊抗苦马豆素抗体的ELISA检测方法，采用间接ELISA法检测绵羊血清抗苦马豆素抗体，包括以下步骤(I)包被使用抗原包被缓冲液将苦马豆素人工抗原稀释到工作浓度，加入96孔酶标板，每孔100 u L，4°C过夜；包被抗原选择为SW-0VA，工作浓度为10 u g/mL,抗原包被缓冲液为PH9. 6的碳酸盐缓冲液，配置方法为2. 93g碳酸氢钠和1. 95g碳酸钠溶解于IOOOmL蒸馏水。(2)封闭将孔内抗原液弃去，加入PBST洗涤液，每孔200 iiL，振荡30s后弃去孔内液体，拍干；重复洗涤3次后，每孔加入20g/L明胶溶液，将酶标板置于37°C培养箱内培养Ih进行封闭；PBST洗涤液的配制方法十二水磷酸氢二钠2. 9g，无水磷酸氢二钾0. 2g，氯化钠8. Og,氯化钾0. 2g，吐温-200. 5mL,溶解于IOOOmL蒸馏水。(3)添加待检血清及阳性、阴性血清弃去孔内明胶溶液,洗涤3次后，向每孔加入100 u L工作浓度的待检血清、阳性血清和阴性血清，并以PBS溶液为空白对照，将酶标板置于37°C培养箱内培养Ih ;血清稀释度为1: 80，稀释液选用包被缓冲液。(4)添加酶标二抗弃去孔内血清，洗涤3次后，向每孔加入100 μ L工作浓度的HRP-兔抗羊酶标抗体，将酶标板置于37°C培养箱内培养Ih;酶标二抗稀释度为1: 1600，稀释液选用包被缓冲液。(5)添加底物溶液弃去孔内溶液，洗涤3次后，向每孔加入ΙΟΟμ L底物溶液，底物使用四甲基联苯胺二盐酸，即TMB ·2Η(1，配置方法为底物显色A液无水醋酸钠13. 6g，柠檬酸1. 6g，30%双氧水O. 3ml，用蒸馏水定容于500mL ;底物显色B液乙二胺四乙酸二钠O. 2g，柠檬酸O. 95g，甘油50mL，O. 15g TMB *2Hcl，用蒸馏水定容于500mL，使用时AB液等量混合，将酶标板置于37°C培养箱内培养30min。(6)终止将酶标板拿出培养箱后，立即向每孔加入2mol/L H2SO4溶液终止反应，立即使用酶标仪测定OD45tl值，以待检血清OD45tl值⑵和阴性血清OD45tl值(N)的比值(P/N)彡2.1判定样品为阳性。实施例1 :使用苦马豆素人工抗原对和田羊进行免疫，通过由以下步骤组成的方法制成1.苦马豆素人工抗 原的制备首先将溴乙酸与N-羟基琥珀酰亚胺反应成活性酯，活性酯再与苦马豆素合成为N-羧甲基苦马豆素，然后与N-羧甲基苦马豆素与BSA缩合，透析后冷冻干燥即为SW-BSA ;其化学反应式如图1、图2、图4所示。2.苦马豆素人工抗原免疫和田羊将和田羊随机分为阴性对照组(I只)和Sff-BSA免疫组(5只)，对免疫组使用弗氏完全佐剂(FAC)进行基础免疫，首免时使用FAC和生理盐水的混合液(体积比1:1)充分乳化制备的SW-BSA ;第一次和第二次加强免疫用弗氏不完全佐剂(FAI)和生理盐水的混合液(体积比1:1)乳化；第三次加强免疫使用生理盐水乳化SW-BSA。免疫组免疫剂量和次数见表I。对照组注射等体积的抗原乳化液。第三次加强免疫IOd后，所有试验和田羊颈静脉采血，分离血清，-20°C保存。表I和田羊免疫组的免疫时间和免疫剂量
权利要求
1.一种绵羊抗苦马豆素抗体的ELISA检测方法，其特征在于，采用间接ELISA法检测绵羊血清抗苦马豆素抗体，包括以下步骤(1)包被使用抗原包被缓冲液将苦马豆素人工抗原稀释到工作浓度，加入96孔酶标板，每孔100yL，4°C过夜；(2)封闭将孔内抗原液弃去，加入PBST洗涤液，每孔200μ L，振荡30s后弃去孔内液体，拍干，PBST洗涤液的配制方法十二水磷酸氢二钠2. 9g，无水磷酸氢二钾O. 2g,氯化钠8. Og,氯化钾O. 2g，吐温-200. 5mL,溶解于IOOOmL蒸馏水；重复洗涤3次后，每孔加入20g/L明胶溶液，将酶标板置于37°C培养箱内培养Ih进行封闭；(3)添加待检血清及阳性、阴性血清弃去孔内明胶溶液，洗涤3次后，向每孔加入100 μ L工作浓度的待检血清、阳性血清和阴性血清，并以PBS溶液为空白对照，将酶标板置于37 °C培养箱内培养Ih;(4)添加酶标二抗弃去孔内血清，洗涤3次后，向每孔加入100μ L工作浓度的HRP-兔抗羊酶标抗体，将酶标板置于37°C培养箱内培养Ih ；(5)添加底物溶液弃去孔内溶液，洗涤3次后，向每孔加入100μ L底物溶液，底物使用四甲基联苯胺，即ΤΜΒ，配置方法为底物显色A液无水醋酸钠13. 6g，柠檬酸1. 6g，30%双氧水O. 3ml，用蒸馏水定容于500mL ;底物显色B液乙二胺四乙酸二钠O. 2g，柠檬酸O.95g，甘油50mL，0. 15g TMB,3mL DMS0，用蒸馏水定容于500mL，使用时AB液等量混合，将酶标板置于37°C培养箱内培养30min ；(6)终止将酶标板拿出培养箱后，立即向每孔加入2mol/LH2SO4溶液终止反应，立即使用酶标仪测定OD45tl值，以待检血清OD45tl值⑵和阴性血清OD45tl值(N)的比值(P/N)≥2.1判定样品为阳性。
2.根据权利要求1所述的绵羊抗苦马豆素抗体的ELISA检测方法，其特征在于，所述的步骤⑴中，包被抗原选择为SW-0VA，工作浓度为10 μ g/mL,抗原包被缓冲液为pH9. 6的碳酸盐缓冲液，配置方法为2. 93g碳酸氢钠和1. 95g碳酸钠溶解于IOOOmL蒸馏水。
3.根据权利要求1所述的绵羊抗苦马豆素抗体的ELISA检测方法，其特征在于，所述的步骤(3)中，血清稀释度为1: 80，稀释液选用包被缓冲液。
4.根据权利要求1所述的绵羊抗苦马豆素抗体的ELISA检测方法，其特征在于，所述的步骤(4)中，酶标二抗稀释度为1: 1600，稀释液选用包被缓冲液。
5.根据权利要求1所述的绵羊抗苦马豆素抗体的ELISA检测方法，其特征在于，所述的步骤(5)中，底物更换为四甲基联苯胺二盐酸，即TMB*2Hcl，在底物显色B液中弃去DMS0。
6.一种检测绵羊抗苦马豆素抗体的ELISA检测试剂盒，其特征在于，试剂盒中包括已包被完全的96孔酶标板(包被抗原为10μ g/mL的SW-0VA)、阳性血清(抗体效价29 211)、阴性血清、HRP-兔抗羊酶标抗体PBS溶液、PBST洗涤液、底物显色A液、底物显色B液、终止液。
全文摘要
本发明公开了一种绵羊抗苦马豆素抗体的ELISA检测方法及试剂盒，采用间接ELISA法检测绵羊血清抗苦马豆素抗体，包括以下步骤(1)包被；(2)封闭；(3)添加待检血清及阳性、阴性血清；(4)添加酶标二抗；(5)添加底物溶液；(6)终止。通过该方法的实施，达到对绵羊免疫效果的快速、敏感、准确的判断，操作方法简单易行，适用于科研院所和基层畜牧系统。
文档编号G01N33/543GK103048447SQ20121052511
公开日2013年4月17日 申请日期2012年11月29日 优先权日2012年11月29日
发明者王帅, 马春晖, 胡建军, 席琳乔, 王连群, 陈根元 申请人:塔里木大学
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