测定adamts-13蛋白酶的方法-山东亚星游戏官网机床有限公司

专利名称：测定adamts-13蛋白酶的方法
技术领域：
本发明属于凝血诊断技术领域，涉及一种在一样本中体外测定血管性血友病因子(VWF)活性的方法。所述方法包括对GPIba蛋白功能获得性变异体的使用，这样就可放弃对瑞斯托霉素、美洲矛头腹毒蛋白(Botrocetin)或与瑞斯托霉素或美洲矛头腹毒蛋白等效的其他物质的使用。本发明此外还涉及一种测定ADAMTS-13蛋白酶的血管性血友病因子(VffF)裂解活性的方法。
背景技术：
血管性血友病因子(VWF)是血浆中的一种大分子多聚体糖蛋白，在初期止血过程中具有重要作用。VWF具有胶原蛋白结合位点和用于定位于血小板表面的糖蛋白Ib(GPIb)的结合位点。GPIb是一种内在膜蛋白，会与另一种内在膜蛋白(糖蛋白IX (GPIX))在血小板膜中形成糖蛋白Ib-1X受体复合物。GPIb是双链分子，由一条表观分子质量约为145kDa的重链(同义词:heavy chain、α链或GPIb α )和一条表观分子质量约为22kDa的轻链(同义词:light chain、β链或GPIbP )构成,这两条链通过二硫键彼此相连[Lopez, J.A.等人(1987)Cloning of the a chain of human platelet glycoproteinlb:A transmembraneprotein with homology to leucine-rich a 2-glycoprotein.Proc.Natl.Acad.Sci USA84:5615-5619]o血管受伤时，VWF结合到暴露的胶原蛋白表面。由于与胶原蛋白结合以及受到增大的剪力(作用在与胶原蛋白结合的VWF上)的影响，VWF发生变化或被激活，从而可以结合到血小板膜的GPIb-1X受体复合物中的GPIb重链(GPIb α )的氨基末端。活化VWF通过这种方式俘获从旁边经过的血小板，使得受伤处形成由VWF、胶原蛋白和血小板构成的第一团聚体。其结果是血小板被激活，从而开始血浆凝血过程，该过程在经过多次放大级联反应和血小板进一步聚集后最终促成伤口的愈合。VWF在质或量上的异常是血管性血友病(同义词:von WillebrandDisease，VWD)的起因，所谓的血管性血友病是最常见的遗传出血性疾病之一。就血管性血友病的诊断而言目前存在不同的筛查方法，例如测定出血时间(BT)、测定VWF抗原浓度(VWF = Ag)的定量法(例如ELISA方法)和测定VWF活性的方法，例如瑞斯托霉素诱导血小板凝集(VWF:RCo)。瑞斯托霉素诱导固定血小板聚集的方法(又称“瑞斯托霉素辅因子检测”)还能识别VWF蛋白用测定VWF抗原浓度的定量法所识别不到的功能性障碍。因此，为能对血管性血友病做出明确诊断，有必要实施用于测定瑞斯托霉素辅因子活性的瑞斯托霉素辅因子检测。实施瑞斯托霉素辅因子检测时通常是将患者的血浆样本与固定的血小板和斯托霉素混合。在斯托霉素的诱导下，样本所含的VWF结合到所添加的血小板的GPIb受体上，从而实现血小板的聚集。这一聚集反应的反应程度与患者样本所含的活性VWF的量之间存在关联。举例而言，这种聚集反应可通过测量传播增长率来加以光学检测，从而实现VWF:RCo活性的量化。与VWF抗原检测相比，瑞斯托霉素辅因子检测的优点在于可对VWF进行活性测定，从而实现对VWF功能性障碍的识别，以及对血管性血友病的不同子类进行分类，这些子类中仅部分子类也是随VWF抗原浓度的降低而出现。一般情况下，进行子类分类时须形成VWF瑞斯托霉素辅因子活性(VWF = RCo)与VWF抗原浓度(VWF = Ag)的比率(Ratio)。对于血管性血友病的子类2A、2B和2M而言，VWF:RCo/VWF:Ag之比通常小于I。通常建议将0.7的比率作为极限值。传统的瑞斯托霉素辅因子检测的不足之处在于实施过程很难自动化，因为在测量过程中需要不断地充分搅拌检测标本(Testansatz)中的血小板。此外，这种检测的精确度相对较低，对相关标准所规定的处于0%至20%范围内的低VWF活性的测定无法充分发挥作用。近来有人研发出了基于GPIba的VWF-ELISA检测，这种检测所使用的重组GPIb a片段(1-289 或 1-290)包含氨基末端 VWF 结合区[WO 01/02853A2 或 Vanhoorelbeke, K.等人(2002)A reliable von Willebrand factor:Ristocetincofactor enzyme-linkedimmunosorbent assay to differentiate between type I andtype 2von Willebranddisease.Semin Thromb Hemost.28(2):161-165 以及 Federicij A.B.等人(2004)Asensitive ristocetin co-factor activity assay withrecombinant glycoproteinIb a for the diagnosis of patients with low vonWillebrand factor levels.Heamatologica 89 (I): 77-85]。这些检测方法借助特异性抗体将重组GPIb α片段结合在酶标板上。添加患者样本和瑞斯托霉素，使得患者样本中的VWF可以结合到重组GPIba片段上。最后借助抗VWF抗体对结合的VWF进行定量检测。结果表明，这种VWF-ELISA检测十分接近于基于血小板的传统VWF瑞斯托霉素辅因子活性检测，甚至比之更敏感、更精确。Hui等人(摘要，ISTH 2007)所描述的基于GPIb α的VWF-ELISA检测使用在位置233和239上具有突变体的重组GPIb α片段(1-483)。这些突变体是所谓的功能获得性突变体，它们在瑞斯托霉素浓度较低的情况下与野生型GPIb α蛋白(W0 93/16712)相比对VffF的亲和性更高，可以更强烈地与VWF相互作用。上述突变体涉及的是久为人知的GPIb a链突变变异体。Miller等人(US 5，317，097)描述的是GPIb α链位置233上的甘氨酸残基被缬氨酸残基(G233V)取代的方法。这种变异是血小板型血管性血友病(PT-VWD)的起因，后者是一种常染色体显性遗传出血性疾病。Russell和Roth描述的是GPIb α链位置239上的甲硫氨酸残基被缬氨酸残基(M239V)取代的方法[Russell，S.D.& BRoth, G.J.(1993)Pseudo-von Willebrand Disease:A mutation in the platelet glycoprotein Ib a geneassociated with a hyperactive surf ace receptor.Blood 81 (7)，1787-1791]。这种变异也会引发PT-VWD。上述基于GPIba的VWF-ELISA检测以及瑞斯托霉素辅因子检测的缺点在于，它们建立在使用瑞斯托霉素或其他可以促使VWF结合到GPIb α链上的外源非生理性调节因子的基础上。瑞斯托霉素是一种来自于诺卡氏菌属(Bakterium Nocardia Iurida)的抗生糖肽，美洲矛头腹毒蛋白(同义词:Co凝集素)是一种来自于矛头腹属的蛇毒，它们通常用于体外诱导VWF结合到血小板和分离GPIb α蛋白或其片段上。使用瑞斯托霉素的缺点是，它不仅会结合到VWF上，还会结合到许多其他类型的蛋白上，例如纤维蛋白原或抗GPIba抗体(在特定的实验中观察到的)。因此，在VWF检测方法中使用瑞斯托霉素存在发生非特异性结合反应或沉淀反应的风险,这些反应会使检测结果失真。

发明内容
因此，本发明的目的是提供一种在不存在瑞斯托霉素的情况下测定VWF活性的方法。达成这个目的的解决方案是使用在就人类GPIba受体氨基酸序列而言的位置233和位置239上具有两处点突变的GPIb α链的功能获得性变异体。在本发明范围内，GPIba链的功能获得性变异体指的是一种在瑞斯托霉素浓度较低的情况下与野生型GPIb α蛋白相比对VWF的亲和性明显更高、可以更强烈地与VWF相互作用的突变变异体。本发明的标的是一种在一样本中测定血管性血友病因子(VWF)活性的方法，其中，将所述样本和分离GPIb α蛋白混合成一检测标本，该检测标本中不添加瑞斯托霉素和美洲矛头腹毒蛋白。所用的GPIb α蛋白包括一氨基酸序列，所述氨基酸序列与人类GPIb a蛋白的野生型序列相比至少包含氨基酸残基1-268，且分别在位置233和239上具有一个取代基Xaa (SEQ ID NO:1)。GPIba链位置233上的甘氨酸残基取代基Xaa和位置239上的甲硫氨酸残基取代基Xaa优选由缬氨酸残基(G233V或M239V)或丝氨酸残基(G233S或M239S)构成。这两个位置上的不同取代基Xaa可以为任意一种组合。在对本发明进行说明时，提及GPIba蛋白的地方均可理解为指向这样一种突变变异体。在进一步过程中，优选不在所述检测标本中添加“瑞斯托霉素或美洲矛头腹毒蛋白的等效物质”。在本发明范围内，“瑞斯托霉素或美洲矛头腹毒蛋白的等效物质”指的是可以体外诱导分离VWF结合到野生型GPIb α链或其片段上的外源(B卩非生理性)物质。本发明的一个优点在于，通过使用GPIba的功能获得性变异体，就无需通过(例如)流体流动、搅拌或振动来对检测标本施加剪应力。就VWF活性测定方法而言，“样本”指的是有可能含有待检测物质(即VWF)的材料。举例而言样本”这一概念包括人和动物的生物液体(如血液、血浆或血清)以及用于血管性血友病患者替代疗法的工业产品(例如Haemate P)，例如VWF定标剂、VffF质控血浆(VWF-KontrolIe)或高浓度VWF浓缩物。必要时须对样本进行预处理，以便可以检测到被分析物或将干扰性的样本成分移除。这种样本预处理可以包括分离和/或溶解细胞或对样本的离心分离。“样本”这一概念还包括包含上述样本材料中的一种样本材料的反应混合物，该样本材料中被加入用作基质的分离WF，以便测定VWF改性因子的活性，在培养VWF基质后需要借助VWF改性因子在这类反应混合物中测定残留VWF活性。举例而言，由血浆样本和分离大分子VWF构成的用于测定该血浆样本中的VWF裂解ADAMTS-13蛋白酶的混合物就是这样一种反应混合物。血浆样本中的ADAMTS-13蛋白酶裂解所添加的VWF基质，从而降低该样本的VWF活性。本发明的方法所用的GPIba链可以是用重组法或合成法制成的GPIb α蛋白。已知的原核或真核表达系统适合用来制造重组GPIb α蛋白，例如细菌(大肠杆菌)表达系统，酵母(例如酿酒酵母、甲醇酵母)表达系统，植物、动物或人类细胞培养表达系统。已知的体外蛋白合成技术适合用来制造合成GPIb α蛋白，例如固相合成(例如Merrifield合成法)。本发明的方法所用的GPIba蛋白优选是一种用重组法在人类细胞培养物(优选人胚肾细胞(HEK细胞)培养物)中制成的GPIba蛋白。本发明的方法所用的GPIba蛋白可在N端上与同源的人类GPIb α信号序列MPLLLLLLLLPSPLHP (SEQ ID NO:2，亦称“氨基酸残基16至I”)融合。作为替代方案，所用的GPIb α蛋白可在N端上与异源信号序列融合，即与一种通常不存在于人类GPIb α多肽中、但在所选表达系统中会对重组表达的GPIb α蛋白的表达和/或分泌产生有利影响的多肽融合。举例而言，MPLQLLLLLILLGPGNSLQLWDTWADEAEKALGPLLARDRR (SEQ ID NO:3)就是一种适用的异源信号序列。此外，本发明的方法所用的GPIb α蛋白还可在C端上与一或多个亲和标签融合，这些亲和标签可使重组表达蛋白结合到亲和载体上，从而实现(例如)重组表达GPIb α蛋白的纯化，或者还实现重组GPIb α蛋白与一固相的结合。长度不超过12个氨基酸的小亲和标签为较佳之选。特别优选的亲和标签是选自组氨酸标签、Flag标签、精氨酸标签、c-Myc标签和Strep标签群组的亲和标签。以较高亲和性结合到亲和标签上的适当亲和载体例如是特异性抗体、固定化阳离子(例如对组氨酸标签具有亲和性的Ni2+)或其他类型的结合对象(例如对Strep标签具有亲和性的链霉亲和素)。根据本发明的方法的一种实施方式，所述GPIba蛋白与一固相相关。“相关”这一概念含义广泛，例如包括共价结合和非共价结合、直接结合和间接结合、表面吸附和凹穴夹杂(Einschluss in eine Vertiefung)。共价结合是分离GPIb α蛋白借助化学键结合到固相上。非共价结合的一个例子就是表面吸附。除了直接结合到固相上之外，分离GPIba蛋白也可通过与其他特异性结合对象的特异性相互作用来间接地结合到固相上，例如通过与抗体的特异性相互作用，优选是与抗GPIb α抗体或与抗亲和标签抗体(只要分离GPIb α蛋白具有亲和标签)的特异性相互作用。在本发明范围内，“固相”这一概念包括一种由非水溶性多孔和/或无孔材料构成的物体，它可以极其不同的形式存在，例如容器、细管、微量滴定板(例如酶标板)、球体、微粒、细棒、条带、滤纸或层析纸等。一般情况下，该固相的表面亲水或可以获得亲水性。所述固相可由各种材料构成，例如无机和/或有机材料、合成材料、天然材料和/或经改性的天然材料。固相材料例如有聚合物(例如纤维素、硝化纤维素、醋酸纤维素、聚氯乙烯、聚丙烯酰胺、交联优选糖酐分子、琼脂糖、聚苯乙烯、聚乙烯、聚丙烯、聚甲基丙烯酸酯或尼龙)、乳胶、陶瓷、玻璃、金属(特别是贵金属，如金和银)、磁体、上述材料的混合物或组合物。所述固相可具有一个由一或多个分层构成的覆盖层，所述分层由(例如)蛋白、碳水化合物、亲脂性物质、生物聚合物、有机聚合物或其混合物构成，用以抑制或避免样本成分与该固相之间的非特异性结合，或者在粒子固相的悬浮稳定性、贮存稳定性、成形稳定性或者抗紫外线、微生物或其他具有破坏作用的用剂的特性等方面达到改善目的。本发明的VWF活性测定方法的一种优选实施方式包括对粒子相关GPIba蛋白(优选乳胶粒子相关GPIb α蛋白)的使用，以及借助粒子固相的GPIba介导凝集对VWF活性的测定。优选使用通过抗体与粒子固相发生关联的GPIba蛋白。此处可用抗 GPIb α 抗体，特别是单克隆抗体 VM16d[Mazurov, A.V.等人(1991)Characterizationof an antiglycoprotein Ibmonoclonals antibody that specifically inhibitsplatelet-thrombin interaction.Thromb Res.62(6)，673-684;购买途径:荷兰于登Sanbio B.V.,产品号 M0N1146]和 SZ-2 [Ruan, C.等人(1987) A murine antiglycoproteinIb complex monoclonal antibody, SZ 2,inhibits platelet aggregation inducedby bothristocetin and collagen.Blood 69 (2), 570-577;购买途径:美国富勒顿BeckmanCoulter Inc.,产品号IM0409]。如果所用的GPIba蛋白在C端上与一或多个Flag标签融合，则也可使用抗Flag抗体[参见US 5,011,912;购买途径:德国施泰因海姆Sigma-Aldrich Chemie GmbH]。定量测定与样本中所存在的VWF的量或活性之间存在关联的凝集反应时，可对粒子聚集体上的光散射加以利用，例如通过测量散射光强度(测混法)或测量介质的浊度(测浊法)。优选在存在去垢剂的情况下通过粒子固相的GPIba介导凝集来测定VWF活性，所述去垢剂优选选自Tween 20、Thesit、Triton去垢剂(例如Triton X-100 或Triton X-405 )和十二烷基硫酸钠(SDS)群组。本发明发现，去垢剂的存在会对粒子固相(特别是乳胶粒子)取决于VWF的凝集速率产生影响:在不同的VWF浓度和逐步升高的Tween 20浓度下测定该凝集速率(参见图4，测定方法如实例5)。从图中可以清楚看到，ATween 20浓度相对较低(0.02-0.lg/L)时，反应强化作用特别明显，随着Tween 20浓度的升高，这种强化作用逐渐变�。⒋锏揭桓鑫榷ǖ那炕�。举例而言，当VWF浓度为149.6%,Tween 20浓度约为lg/L时，达到稳定的强化水平，强化度为不存在Tween 20时的初始值的80%。如果将Tween 20用作去垢剂，就会存在两种可能性。其一，可以在浓度较低(0.02-0.lg/L)时调节Tween 20，以便对特定VWF浓度进行最高达20%的特强强化。这样就会在Tween 20浓度为0.05g/L (在检测标本中)、VWF浓度为30.4%时获得216%的凝集速率强化度。由于低VWF浓度特别难以测定，因而此时进行反应强化就特别有帮助。其二，如果在去垢剂的饱和区内针对所有的相关VWF浓度进行操作，则测量系统通常会更加稳定。例如自lg/L的Tween 20浓度起，情况即如此。这种方案更适用于VWF浓度范围较宽的筛查检测。如果需要在测定VWF浓度时将凝集反应强化20%以上，则0.6-20.0g/L (优选lg/L)的Tween 20浓度是有利的。其他去垢剂，如Thesit (同义词:Polydocanol,瑞士罗特里斯特Scharer
&Schlapfer Ltd.)、Triton 去垢剂(例如 Triton X-100 或 Triton X-405 )和十二烧基硫酸钠(SDS)，显示出稳定的与浓度有关的凝集反应强化作用(参见图5，测定方法如实例5:45 μ L样本，但所含为Thesit而非Tween 20)。测定一血浆样本的VWF活性时，通常须用缓冲液或乏VWF血浆对样本进行预稀释。在需要制作定标曲线的情况下，须对正常血浆(例如标准人类血浆)进行同样的处理。本发明发现，在用乏VWF血浆稀释的过程中以及在常规的去垢剂浓度(在检测标本中为lg/L)下，GPIba乳胶粒子的凝集会被非期望地强化，但是通过足够多的去垢剂可以抑制这种强化作用。如果如图6所示在一含有45 μ L样本的检测标本中用乏VWF血浆或缓冲液稀释该样本(在此情况下为标准人类血浆)，则在存在乏VWF血浆的情况下，特定的VWF浓度下该样本中就会出现较高的凝集速率。而如果在检测系统中完全放弃使用去垢剂，并用乏VWF血浆稀释标准人类血浆样本，所产生的凝集速率就会低于用缓冲液稀释时的凝集速率。但如果添加足够多的去垢剂(例如> 3g/L Thesit)，用缓冲液稀释和用缺乏血浆稀释情况下的凝集速率就会彼此相同。借此可确保缓冲液对血浆样本的真正稀释。无论是对正常血浆(用作定标剂)的稀释还是对患者样本的可能的稀释，均可通过简单的缓冲液来实现，而无需借助于乏VWF血浆，这对检测是特别有利的。缓冲液价格便宜，贮存稳定性有保证，许多自动检测机仅用一种缓冲液来实施多种检测。此外,乏VWF血浆并非任何一个实验室都有供应。测量VWF浓缩物时需要进行大量的稀释操作，其中，能用缓冲液真正有效地达成稀释目的也是十分有利的。另一优选方案是在存在聚乙烯吡咯烷酮(PVP)、优选在该聚乙烯吡咯烷酮在检测标本中的浓度为0.1%至1.0%的情况下以及/或者在存在右旋糖酐T500、优选在该右旋糖酐在检测标本中的浓度为0.1%至3%的情况下以及/或者在存在藻酸盐500-600cP、优选在该藻酸盐500-600cP在检测标本中的浓度为0.01%至0.2%的情况下通过粒子固相的GPIba介导凝集来测定VWF活性。本发明的VWF活性测定方法的另一优选实施方式涉及的是一种具有竞争力的检测方案。这种方法包括对粒子相关抗GPIba抗体(优选VM16d)和反应标本(Reaktionsansatz)中的粒子相关VWF的使用以及GPIb α蛋白的添加。在存在GPIb α蛋白、不存在瑞斯托霉素、美洲矛头腹毒蛋白或等效物质的情况下，粒子发生凝集。添加含有VWF的样本，可以抑制这种凝集反应。凝集反应受到抑制的程度与存在于样本中的VWF的量或活性存在关联。本发明的VWF活性测定方法的另一优选实施方式包括对与非粒子固相相关的GPIba蛋白(优选与微量滴定板表面相关的GPIb α蛋白)的使用以及通过测定已结合到该GPIba蛋白上的VWF量对VWF活性的测定。优选使用通过抗体与非粒子固相发生关联的GPIba蛋白。此处可用抗GPIb α抗体，特别是单克隆抗体VM16d(参见上文)和MB45 [参见Modderman, P.W.等人(1992) Glycoproteins V and Ib-1X form a noncovalent complexin the plateletmembrane.J.Biol.Chem.267 (I), 364-369 及其中所引用的参考资料 26;购买途径:荷兰阿姆斯特丹Sanquin =PeliCluster CD42b，产品号M9142]。如果所用的GPIb α蛋白在C端上与一或多个Flag标签融合，则也可使用抗Flag抗体(参见上文)。测定已结合到GPIb α蛋白上的VWF量时，可使用直接或间接与一信号形成系统的成分相关的抗WF抗体，从而实现GPIba结合VWF量的量化。由于只有“活性”(功能完好的)VWF会结合到GPIb α受体上，因此根据这一原理测定的VWF抗原浓度与VWF活性之间存在关联。本发明还涉及一种应用于本发明的方法的检测试剂盒，其中，所述检测试剂盒包括至少一种试剂，所述试剂含有GPIb α蛋白，所述GPIba蛋白包括一氨基酸序列，所述氨基酸序列与人类GPIb α蛋白的野生型序列(SEQ ID NO:1)相比至少包含氨基酸残基1-268，且分别在位置233和239上具有一个氨基酸取代基Xaa，所述GPIb α蛋白与一粒子固相相关。该检测试剂盒优选包括一含有乳胶粒子相关GPIba蛋白的试剂。所述GPIba蛋白优选通过抗体与所述粒子固相发生关联。该试剂可以液态或冻干形式加以提供。如果该试剂以冻干粉剂形式存在，则所述检测试剂盒还可包含使该冻干粉剂悬浮所需的溶剂，例如蒸馏水或适当的缓冲液。本发明此外还涉及一种应用于本发明的方法的检测试剂盒，其中，所述检测试剂盒包括一非粒子固相，优选微量滴定板，包括一氨基酸序列的GPIb α蛋白与所述非粒子固相相关，所述氨基酸序列与人类GPIba蛋白的野生型序列(SEQ ID NO:1)相比至少包含氨基酸残基1-268，且分别在位置233和239上具有一个氨基酸取代基Xaa。所述GPIb α蛋白优选通过抗体与所述非粒子固相发生关联。所述检测试剂盒还可包括一试剂，该试剂含有一抗VWF抗体，优选直接或间接与一信号形成系统的成分相关的抗VWF抗体。所述含有抗VWF抗体的试剂可以液态或冻干形式加以提供。如果该试剂以冻干粉剂形式存在，则所述检测试剂盒还可包含使该冻干粉剂悬浮所需的溶剂，例如蒸馏水或适当的缓冲液。本发明还涉及一种分离GPIb α蛋白在体外测定血管性血友病因子(VWF)活性方法中的应用，所述分离GPIba蛋白包括一氨基酸序列，所述氨基酸序列与人类GPIba蛋白的野生型序列(SEQ ID NO:1)相比至少包含氨基酸残基1-268，且分别在位置233和239上具有一个氨基酸取代基Xaa，其中，所述VWF活性测定方法不使用瑞斯托霉素和美洲矛头腹毒蛋白。使用位置233和/或位置239上的氨基酸取代基Xaa由缬氨酸残基或丝氨酸残基构成的分离GPIba蛋白为较佳之选。这两个位置上的不同取代基Xaa可以为任意一种组
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口 ο本发明此外还涉及一种获得分离GPIba蛋白的方法，所述分离GPIb α蛋白包括一氨基酸序列，所述氨基酸序列与人类GPIba蛋白的野生型序列(SEQ ID NO:1)相比至少包含氨基酸残基1-268，且分别在位置233和239上具有一个氨基酸取代基Xaa，其特征在于，在原核细胞或真核细胞的培养物中重组表达所述GPIba蛋白，通过使用亲和载体以亲和层析的方式从细胞溶解产物或细胞培养上清液中分离出所述GPIb α蛋白。用于获得位置233和/或位置239上的氨基酸取代基Xaa由缬氨酸残基或丝氨酸残基构成的分离GPIba蛋白的方法为较佳之选。这两个位置上的不同取代基Xaa可以为任意一种组合。本发明的另一标的是一种测定ADAMTS-13蛋白酶的血管性血友病因子(VWF)裂解活性的方法。ADAMTS-13 (a disintegrin and metalloprotease with thrombospondinmotifs)是一种溶蛋白性裂解血管性血友病因子(VWF)、从而减小血管性血友病因子(VWF)活性的金属蛋白酶。ADAMTS-13酶活性的先天性或获得性缺乏是各种疾病的起因，例如血栓性血小板减少性紫癜(TTP)，一种危及生命的血栓栓塞性微循环疾病。在TTP患者的血浆中发现的异常巨大的VWF多聚体被视为引起大量聚集VWF和血小板的血栓形成的原因所在。因此，在患者样本中测定ADAMTS-13蛋白酶的VWF裂解蛋白酶活性具有诊断学意义。在测定ADAMTS-13蛋白酶的VWF裂解活性或诊断ADAMTS-13缺乏症方面，现有技术中存在多种不同的方法:Furlan等人(1996)描述的方法是以经纯化的人类VWF为基质来培养含有ADAMTS-13蛋白酶的样本，随后通过借助于SDS琼脂糖凝胶电泳的VWF多聚体分析或通过借助于聚丙烯酰胺凝胶电泳的VWF片段分析，随后再通过免疫印迹来检测ADAMTS-13蛋白酶的蛋白水解活性[Furlan, M., Robles, R.及Ljirnmle,B.(1996)Partial purification andcharacterization of aprotease from human plasma cleaving von Willebrand factorto fragmentsproduced by in vivo proteolysis.Blood 87，10:4223-4234]。这类借助凝胶电泳而实现的多聚体分析工作量极大，耗时颇多，因而不适用于临床实验室。其他的功能检测方法测定ADAMTS-13蛋白酶的蛋白水解活性的方式是以VWF为基质来培养含有ADAMTS-13蛋白酶的样本，随后再测定VWF基质的活性损失。样本中所含ADAMTS-13蛋白酶越多，被裂解的VWF基质就越多，之后可在反应混合物中检测到的VWF活性就越少。这类功能检测方法的优点在于，通过将VWF用作基质以及通过测量大分子多聚体的功能丧失，可以体外模拟ADAMTS-13蛋白酶在活体内的相关功能。WO 2004/005451A2所揭示的方法是以经纯化的人类VWF为基质来培养含有ADAMTS-13蛋白酶的样本，随后借助瑞斯托霉素辅因子检测通过测定残留在反应混合物中的VWF活性来检测ADAMTS-13蛋白酶的蛋白水解活性。替代方案是通过胶原结合检测来测定残留在反应混合物中的VWF活性(参见WO 00/50904)。其缺点是反应混合物的培养时间极长，部分须连夜进行，以便使VWF被充分地蛋白水解。Kostousov, V. , Fehr, J. , Bombeli, T.(2006)Novel,sem1-automated, 60-min-assay to determine von Willebrandfactorcleaving activity of ADAMTS-13. Thrombosis Res. 118:723-731 则描述了一种经改进的方法，可以将培养时间缩减至60分钟。US 2007/0065895A1和US 2005/0186646A1所揭示的方法是以具有特异性ADAMTS-13蛋白酶裂解位点的肽或VWF肽(片段)为基质来培养含有ADAMTS-13蛋白酶的样本，随后再借助SDS-PAGE通过对所生成的肽片段进行分析以及视情况通过免疫印迹来检测ADAMTS-13蛋白酶的蛋白水解活性。已知检测系统的缺点在于不是技术上太复杂(例如借助SDS-PAGE分析蛋白水解所生成的基质片段)，就是没有对天然VWF基质加以利用，因而可能无法识别到ADAMTS-13蛋白酶某些功能障碍。因此，本发明的目的是提供一种测定ADAMTS-13蛋白酶的血管性血友病因子(VWF)裂解活性的方法，这种方法可以尽可能多地检测到ADAMTS-13蛋白酶功能障碍，还可以在传统的临床分析仪上以节省时间的方式自动进行。达成这个目的的解决方案是将一可能含有ADAMTS-13蛋白酶的样本和用作基质的分离VWF混合成一反应标本，其中，所述VWF基质由大分子多聚体VWF构成，所述大分子多聚体VWF包含有具有至少一处氨基酸序列变异(多态或突变)的VWF单体，所述氨基酸序列变异使得所述VWF基质与大分子多聚体VWF是由野生型VWF单体构成的VWF基质相比，可以加速ADAMTS-13的分解作用。先在活体内将人类VWF单体合成2813个氨基酸长度的前体蛋白。通过细胞内处理产生大小可超过20000kDa的VWF多聚体。这些多聚体由通过二硫键彼此相连大小为275kDa长度为2050个氨基酸的呈线性分布的VWF单体构成。该VWF以大小自500kDa (二聚体)至15000kDa不等的多聚体的球状形式在血浆中循环。在本发明范围内，“大分子多聚体VWF基质”指的是一种由10个以上二聚化VWF分子构成、大小超过5000kDa的VWF蛋白，这可以通过本领域技术人员熟悉的凝胶电泳加以确证。此外，大分子多聚体VWF还包含有具有至少一处氨基酸序列变异(多态或突变)的VWF单体，所述氨基酸序列变异使得所述VWF基质与大分子多聚体VWF是由野生型VWF单体构成的VWF基质相比，可以加速ADAMTS-13的分解作用。VffF蛋白的氨基酸序列变异可以提高VWF对ADAMTS-13蛋白酶溶蛋白性裂解的感受性，这一点属于现有技术[参见 Hassenpflug, ff. A. , Budde, U. , Obser, T. , Angerhaus, D. , Drewke, E. , Schneppenheim, S. , Schneppenheim, R. (2006)Impact of mutationsin the von Willebrand factor A2domain onADAMTS13-dependent proteolysis. Blood107: 2339-2345 或 Rayes, J., Hommais, A., Legendre, P., Tout, H., Veyradier, A., Obert,
B.,Ribba, A.S., Girma, J.P.(2006)Effect of von Willebrand disease type 2B andtype 2M mutations onthe susceptibility of von Willebrand factor to ADAMTS-13.J Thromb Haemost.5:321-328]。特别适用于本发明的VWF基质应该由大分子多聚体VWF构成，所述大分子多聚体VWF包含有VWF单体，所述VWF单体具有至少一处来自下列群组的氨基酸序列变异:P1648S、E1638K、G1505R、S1506L、M1528V、R1569del、R1597W、V1607D、G1609R、G1629E、G1631D、R1597Q、V1499E 和 Y1584C。氨基酸位置的说明与VWF前体蛋白2813个氨基酸长度的氨基酸序列有关(参见NCBI Accession N0.AAB59458, Version AA59458.1，Gl: 340356)。“del” 这个缩写表示的是相关氣基酸残基的缺失。有关血管性血友病因子的突变和多态命名，另见Goodeve, A.C., Eikenboom, J.C.J., Ginsburg, D., Hilbert, L., Mazurier, C., Peake,1.R., Sadler, J.E.和 Rodeghiero, F.(2001)A Standardnomenclature for von Willebrand factor genemutations and polymorphisms.Thromb Haemost.85:929—931。其他天然存在的或人工制成的VWF氨基酸序列变异同样适用于本发明，只要它们能使得所生成的VWF基质与大分子多聚体VWF是由野生型VWF单体构成的VWF基质相比，可以加速ADAMTS-13的分解作用，也就是说，所生成的VWF基质对ADAMTS-13蛋白水解具有更高的感受性。“对ADAMTS-13蛋白水解具有更高的感受性”表示的是，大分子多聚体VWF基质在体外被ADAMTS-13蛋白水解的速度超过纯野生型的大分子多聚体VWF基质，亦即，在相同的培养条件下VWF基质的断裂程度更大，这可以通过本领域技术人员熟悉的凝胶电泳加以确证。本发明所使用的分离大分子多聚体VWF基质可从适当VWF氨基酸序列变异的杂合或纯合载体的捐献者血衆(Spenderplasmen)中获得,或者可以借助本领域技术人员熟悉的方法加以重组表达。用重组法制成的VWF基质的优点在于，它没有任何在移入检测标本的过程中会导致检测结果失真的ADAMTS-13污染，且其完全多聚化，不像从血浆中分离出来的VWF那样被蛋白水解。根据本发明用于测定ADAMTS-13蛋白酶的血管性血友病因子(VWF)裂解活性的方法的一种优选实施方式，通过将所述样本附加地与肝磷脂和/或分离天然GPIb α蛋白和/或重组野生型GPIb α蛋白以及瑞斯托霉素或美洲矛头腹毒蛋白混合，还可进一步加速VWF基质的分解。为此，也可将所述样本与包括一氨基酸序列的重组或合成GPIba蛋白混合，所述氨基酸序列与人类GPIb α蛋白的野生型序列(SEQ ID NO:1)相比至少包含氨基酸残基1-268，且分别在位置233和239上具有一个氨基酸取代基Xaa。所用GPIba蛋白的位置233和/或位置239上的氨基酸取代基Xaa优选由缬氨酸残基或丝氨酸残基构成。用VWF基质培养样本后残留在反应标本中的VWF活性可用不同的方式加以测定，例如通过测量瑞斯托霉素辅因子活性(VWF:RCo)或其他的已知方法。一种优选实施方式用以测定反应标本中的残留VWF活性的方法是将该反应标本或它的等分试样与包括一氨基酸序列的分离GPIba蛋白混合，不添加瑞斯托霉素和美洲矛头腹毒蛋白，其中，所述氨基酸序列与人类GPIba蛋白的野生型序列(SEQ ID NO:1)相比至少包含氨基酸残基1_268，且分别在位置233和239上具有一个氨基酸取代基Xaa(优选Xaa=缬氨酸残基或丝氨酸残基)。特别优选的方案是上述GPIba蛋白与一粒子固相相关，该粒子固相根据残留VWF活性发生凝集。借助这一凝集反应可测定反应标本中的残留VWF活性，根据残留VWF活性又可得知所述样本所含的ADAMTS-13活性。本发明在一样本中测定ADAMTS-13蛋白酶的血管性血友病因子(VWF)裂解活性的方法的优点主要在于可以免去对VWF基质的尿素处理，使用尿素会带来这样的风险:如果预处理时没有严格遵守培养时间，就会测到过低的VWF活性。在现有技术的各种各样方法中，必须通过用尿素或具有相似变性作用的物质对VWF基质进行预处理来使VWF完全能够被 ADAMTS-13 蛋白酶分解(参见 WO 2004/005451A2)。由于任何一份需要在其中对ADAMTS-13蛋白酶的VWF裂解活性加以测定的人类血浆样本中均含有样本固有WF,因而在对原有检测标本进行测量的同时并行测量一第二检测标本，是有利的；测量时，用本发明的方法对同一样本的第二等分试样进行分析，但并不对与VWF基质混合的样本进行与原有检测标本一样长时间的培养,而是在样本和VWF基质混合后立即在第二检测标本中测定VWF活性。在此情况下，第二检测标本中的VWF活性(无培养步骤)与原有检测标本中的VWF活性(经用于实现VWF蛋白水解的培养步骤)之差就是在原有检测标本中被ADAMTS-13分解的VWF活性。

图1本发明测定VWF所应用的GPIb a-(aal-285, G233V/M239V)检测系统或野生型GPIb a -ELISA检测系统的结构由实例4给出。将VWF/Faktor VIII浓缩物Haemate 的四份不同稀释物用作样本。在不存在瑞斯托霉素(Omg/mL)的情况下，使用突变GPIb a -(aal-285, G233V/M239V)时，VWF会发生与浓度有关的强烈结合(上图)。在添加瑞斯托霉素的情况下，这种结合可小幅上升，其原因可能在于非特异性结合，这种结合即使不存在GPIba也会发生。而野生型GPIba只需添加1.2mg/mL瑞斯托霉素就会发生程度相当的VWF结合。使用野生型GPIba时，如果不添加瑞斯托霉素，就不会出现任何结合现象(下图)。图2借助GPIb α乳胶粒子凝集检测在不使用瑞斯托霉素的情况下用于在人类柠檬酸盐血浆样本中测定VWF活性(10%-200%VWF活性)的定标曲线(参见实例5)。图示内容为与VffF活性有关的粒子凝集反应速度。图3借助GPIb α乳胶粒子凝集检测在不使用瑞斯托霉素的情况下用于在人类柠檬酸盐血浆样本中测定低VWF活性O 3%VWF活性)的定标曲线(参见实例5，45 μ L样本)。图示内容为与VWF活性有关的粒子凝集反应速度。图4在样本不含瑞斯托霉素以及在检测标本中存在不同Tween 20浓度的情况下以不同VWF浓度(14.9%至149.6%)进行的GPIb α乳胶粒子凝集检测(参见实例5，Tween 20浓度变化，15 μ L样本)。图5
在样本不含瑞斯托霉素以及在检测标本中存在不同Thesit浓度的情况下以不同VWF浓度(8%至40%)进行的GPIb α乳胶粒子凝集检测(参见实例5，用Thesit代替Tween 20，45μ L 样本)。图 6在样本不含瑞斯托霉素以及在检测标本中存在不同Thesit浓度的情况下以不同VffF浓度(已预先用乏VWF血浆或缓冲液加以稀释)进行的GPIb α乳胶粒子凝集检测(参见实例 5，用 Thesit 代替Tween 20，45 μ L 样本)。
具体实施例方式下面借助实例从试验角度对本发明的各个方面进行说明，但本发明并不限于这些实例。实例1:克隆 GPIba-(G233V/M239V)-(3XFlag)_(6XHis)组成物对表达载体pIRES neo2(BD Biosciences, Clontech,商品号:6938-1)进行改性，使其在EcoRI酶切位点和Notl酶切位点之间包含一 3 XFlag标签和一 6 XHis标签。在标签序列的上游(5’)嵌入一个为信号肽(SEQ IDN0:2)和人类GPIba受体(SEQ ID N0:1)的氨基酸1-285编码的片段，这个片段在为氨基酸位置233和239编码的位点上分别包含有一个为缬氨酸编码的密码子。实例2:在册1(细胞中表达重组6 让0-(6233￥/]\1239￥)-(3\ 1&8)-(6\把8)融合蛋白用实例I中所描述的组成物转化HEK 293细胞(人胚肾细胞；ATCC编号:CRL-1573;海德堡 Cell Lines Service CLS)。在下列物质中培养这些细胞:DMEM (商品号:31966-021, Invitrogen)经热灭活处理的+10%FBSOrigin EU (商品号:10270-106，Invitrogen)或 10%FBSOrigin USA (商品号:A15-003,批号:A01123-678，PAA)+l%Antibiotic-Antimycotic-SoIution (IOOx)(商品号:P11-002，PAA)+0.l%Gentamycin-Solution 50mg/ml (商品号 Pl 1-005，PAA)+500 μ g/ml Geneticin (G418)-Solution 50mg/ml active Geneticin (商品号:10131-027, Invitrogen)表达(生产):0PTIPR0-SFM (商品号 J23O9-Ol9, Invitrogen)+0.5%Antibiotic-Antimycotic-Solution(IOOx)(商品号:Pll-002, PAA)+0.05%Gentamycin-Solution 50mg/ml (商品号:Pll-005, PAA)+2%Glutamax I (100X)(商品号:35050-038, Invitrogen)无Geneticin过程如下:I)将T175中的细胞(IKryo为5-lOx 10e6细胞)和培养物在含血清的介质中溶解96h
2)碎裂成 4x T175，培养 72_96h3)碎裂成 25x T175，培养 72_96h4)将一个T175碎裂，并继续培养以作储备。将剩余的24x T175碎裂成3xCellStack Corning (每 CellStack 10 层，总共 6360cm2),培养 72h5)移除介质，清洗包含DMEM但不具有FBS l_2x的单层，添加不含血清的OPTIPRO-SFM (每 CellStack1.8 升)，培养 96h6)收获介质。用离心法滤除上清液，回收溶解后的细胞团块，将其重新添加到具有新鲜 0PTIPR0-SFM 的 CellStack 中，培养 96h7)如 6)8 )最终收获介质，结束培养。实例3:亲和层析分离重组 GPIba-(G233V/M239V)-(3XFlag)_(6XHis)融合蛋白通过离心分离法(35min,lOOOOUpM, Beckman J2-21,德国 BeckmanCoulterGmbH)从存留的细胞或细胞片段中分离出按实例2获得的、包含GPIb α - (G233V/M239V)-(3XFlag)-(6XHis)的介质。使用分离限值为IOkDa的超滤盒(Ultrafiltrationskassette) (PES 10,德国 Schleicher & Schiill)通过切向超滤将由此获得的不含细胞的上清液浓缩至初始体积的1/10。用Ni2+琼脂糖凝胶(His Prep FF16/10,瑞典GE Healthcare)按制造商指示通过亲和层析法进行纯化处理。为了实现GPIb α - (G233V/M239V) - (3 XFlag) - (6 XHis)的结合，须在浓缩上清液中添加500mMol NaCl、20mMol Na2HPO4和5mM咪唑，并通过添加5M HCl将pH值调节至pH 7.4。通过用成分为500mMol NaCl、20mMol Na2HPO4和5mM咪唑的缓冲液(pH 7.4)冲洗导柱来移除未结合的成分。用成分为20mMol Na2HPO4、500mMoI NaCl, 500mMol咪唑的缓冲液(pH 7.4)对结合的 GPIb α - (G233V/M239V) - (3 XFlag) - (6 XHis)进行洗脱处理。用超滤膜分离限值为IOkDa的超滤搅拌室(Ultrafiltrationsriihrzelle) (OMEGA10K，美国Pall Life Sciences)将由此获得的洗脱液浓缩至初始体积的1/10。用层析柱Superdex 200prep grade 35/600 (瑞典GE Healthcare)按制造商指示通过凝胶过滤法对污染物进行进一步的纯化和分离。用成分为0.048mol/L Na2HP04、0.02mol/L KH2PO4,
0.145mol/L NaCl、0.015mol/L似％的缓冲液(pH 7.2)以5.0ml/min的流率进行层析处理。施加样本后，GPIb α -(G233V/M239V) -(3XFlag) -(6XHis)以一根据约 300ml 的洗脱体积的峰值从所用的层析柱中洗脱。实例4:本发明在不使用瑞斯托霉素的抗FLAG/GPIb a -ELISA中测定VWF活性的方法使用已涂有抗Flag标签抗体(美国圣路易斯Sigma, ANT1-FLAG HS, M2coated96-well Plates (clear),产品号P 2983)的酶标板。在该酶标本的每个凹穴内均加入IOOyL的磷酸缓冲液，该磷酸缓冲液含有浓度为2.4yg/mL的重组野生型GPIba-(3XFlag)-(6XHis)融合蛋白(细胞沉积后培养基的1:10稀释上清液)或分离重
GPIb α - (aal-285, G233V/M239V) - (3 X Flag) - (6 X His)融合蛋白(参见实例 3)，在夜间于2-8V下进行培养。用磷酸缓冲液(+0.0111,,Tween )进行过四重清洗后，添加50 μ L经磷酸缓冲液+0.1%牛血清白蛋白稀释的Hamate (德国马尔堡ZLB Behring)稀释物和50 μ L经磷酸缓冲液+0.1%牛血清白蛋白稀释的瑞斯托霉素稀释物。随后在室温下培养I小时。用上述方法进行过四重清洗后，添加100 μ L的辣根过氧化物酶相关抗VWF抗体(RabbitAnt1-HumanVWF/HRP, DAKO, Ref.P0226),在室温下培养I小时后按上述方式进行清洗。随后添加100 μ L用作基质的四甲基联苯胺溶液(TMB Substrat,德国马尔堡Dade BehringMarburg GmbH, Ref.450684)，在室温下培养4分钟。通过添加100 μ L的0.5Ν硫酸来终止反应。随后用分光光度计在405nm下测量消退度。在不存在瑞斯托霉素的情况下，使用根据实例1-3制得的突变GPIb α时，VffF会发生与浓度有关的强烈结合。在添加瑞斯托霉素的情况下，这种结合小幅上升，其原因可能在于非特异性结合，这种结合即使不存在GPIba也会发生。而野生型GPIba只需添加1.2mg/mL瑞斯托霉素就会发生程度相当的VWF结合。使用野生型GPIba时，如果不添加瑞斯托霉素，就不会出现任何结合现象(图1)。实例5:本发明在不使用瑞斯托霉素的GPIba乳胶粒子凝集检测中测定VWF活性的方法准备三种试剂:试剂1:将单克隆抗GPIba抗体VM16d (荷兰于登Sanbio B.V.，产品号M0N1146)结合到乳胶粒子的表面，使粒子再悬浮在一用于长期贮存的缓冲液中(0.6g/L TRIS,1.1%亮氨酸，12.5%蔗糖，0.05%HSA, 6.25mg/L庆大霉素和0.625mg/L两性霉素，pH 8.25，乳胶浓度
0.22%)。试剂2:乏VWF血浆试剂3:将下列成分混合，产生总体积为30mL的试剂3:2.5mL聚乙烯吡咯烷酮(PVP)(德国Fluka)在磷酸缓冲液(pH 7.1)中的7.5%溶液，12.9mL (0.625mg/mL)在Tris缓冲液(pH 7.1)中的异嗜性抗体阻断剂I(Scantibodies Laboratory Inc,美国 Santee, CA 92071, ), Tvveen(S) 20 (美国密苏里州圣路易斯Sigma)在磷酸缓冲液(pH 7.2)中浓度为21g/L的3.4mL溶液，重组GPIba-(G233V/M239V)-(3xFlag)_(6xHis)(参见实例 3)在磷酸缓冲液(pH
7.1)中浓度为5.59mg/mL的0.086mL溶液，以及11.2mL 磷酸缓冲液(pH 7.1)。在自动凝血分析仪BCS (BehringCoagulation System,德国马尔堡 DadeBehring Marburg GmbH)上进行检测。将15 μ L的人类朽1檬酸盐血衆样本、30 μ L试剂2和70 μ L试剂3混合在一起。通过添加混合40 μ L试剂I来开始反应过程。在575nm下持续对反应混合物的消退度进行测量。乳胶粒子的凝集速度与样本中的VWF活性有关。为了计算VWF活性,利用标准人类血衆(德国马尔堡Dade Behring Marburg GmbH)来制作定标曲线。将标称瑞斯托霉素辅因子值用作该BCS 系统的VWF标定值。通过在减少试剂2用量的同时提高标准人类血浆的体积，产生最高达200%的VWF活性。通过用试剂2稀释该标准人类血浆，产生较低的VWF活性。图2显示的是一种典型的定标曲线。借助于测定的反应速度可以在该定标曲线上读取某一样本的VWF活性。在一用于在样本中测量特低VWF活性的检测标本中使用45 μ L样本，而非15 μ L或30 μ L样本(参见上文)。进行定标时，用试剂2稀释标准人类血浆，从而产生最低达3%的低VWF活性(参见图3)。这个检测标本使得对极低VWF活性的精确测定成为可能，这一点在形成VWF活性/抗原比率以便对血管性血友病的不同子类进行分类时特别重要。通过将标本中的PVP浓度提高到0.35%以及将样本体积增大到60 μ L，可以进一步强化与VWF有关的凝集反应，还可以进行1%VWF分化和0%VWF分化。借此可以极为可靠地将第3类血管性血友病(0%VWF)与极度缺乏的其他类型(例如1-5%)区别开来。实例6:本发明以经尿素预处理的大分子多聚体VWF (P1648S)为VWF基质测定ADAMTS-13蛋白酶的VWF裂解活性的方法1.反应缓冲液:lmmol/L Pefabloc SC (德国曼海姆 Roche DiagnosticsGmbH),
12.Smmol /T, BaCl2, Smmol /T, TRIS, pH 8.0 ；2.准备基质缓冲液，在室温下精确培养5分钟:8.3U/mL (830%)用重组法制成的大分子多聚体 VWF-P1648S，4.6mol/L 尿素，4.6mmol/LTRIS, pH 8.0 ；3.在15 μ L人类血浆样本中掺入300 μ L反应缓冲液，再与150 μ L基质缓冲液混合；4.在37°C下将检测标本培养4至8小时；5.以如实例5所述的方式，在将该反应混合物用作样本的情况下测量VWF活性。实例7:本发明以经尿素预处理的重组大分子多聚体VWF (P1648S)为VWF基质测定ADAMTS-13蛋白酶的VWF裂解活性的方法1.将6 μ L人类血浆样本(用反应缓冲液1:6稀释)与20 μ L反应缓冲液混合；2.在37°C下将该混合物培养5分钟以激活ADAMTS-13蛋白酶；3.添加12μ L基质缓冲液(5U/mL (500%)重组大分子多聚体VWF-P1648S，5mol/L尿素，5mmol/L Tris-HCl, pH 8.0)；4.在37 °C下将检测标本培养20分钟；5.以如实例5所述的方式，在将该反应混合物用作样本的情况下测量VWF活性。实例8:本发明以大分子多聚体VWF (P1648S)为VWF基质测定ADAMTS-13蛋白酶的VWF裂解活性的方法和借助/不借助ADAMTS-13分解来求差的方法检测I:1.将 10 μ L 人类血浆样本 20 μ L ADAMTS-13 激活缓冲液(18.75mmol/L BaCl2, pH
8.0, 5mmol/L Tris-HCl,1.5mmol/L Pefabloc SC(德国曼海姆 Roche Diagnostics GmbH))混合；2.在37 °C下将该混合物培养5分钟；3.添加 20 μ L 在 5mmol/L Tris-HCl 中的浓度为1.25U/mL (125%)的重组 VWF 基质(P1648S)，pH 8.0 ；4.在37 °C下将检测标本培养20分钟；5.以如实例5所述的方式，在将该反应混合物用作样本的情况下测量VWF活性。检测2:以如检测I所述的方式对同一个人类血浆样本的另外IOyL进行处理，但此处不实施在37°C下培养20分钟的培养步骤(参见第4步)，而是在添加VWF基质(P1648S)后，立即以如实例5所述的方式在将该反应混合物用作样本的情况下测量VWF活性。检测I和检测2的VWF活性差就是被分解的VWF活性，也就是ADAMTS-13活性。借助定标曲线据此测定血浆样本中的ADAMTS-13活性。
权利要求
1.一种在一样本中测定ADAMTS-13蛋白酶的血管性血友病因子(VWF)裂解活性的方法，其包括下列步骤: a)将所述可能包含ADAMTS-13蛋白酶的样本与用作基质的分离VWF混合成一反应标本， b)培养所述反应标本，以及 c)测定所述反应标本中的残留VWF活性，其特征在于，所述VWF基质由大分子多聚体VWF构成，所述大分子多聚体VWF包含有具有至少一处氨基酸序列变异的VWF单体，所述氨基酸序列变异使得所述VWF基质与大分子多聚体VWF是由野生型VWF单体构成的VWF基质相比，可以加速ADAMTS-13的分解作用。
2.根据权利要求1所述的方法，其中，所述由大分子多聚体VWF构成的VWF基质的VWF单体具有至少一处来自下列群组的氨基酸序列变异:P1648S、E1638K、G1505R、S1506L、M1528V、R1569del、R1597W、V1607D、G1609R、G1629E、G1631D、R1597Q、V1499E 和 Y1584C。
3.根据权利要求1或2中任一项权利要求所述的方法，其中，所述大分子多聚体VWF基质是用重组法制成。
4.根据权利要求1或2中任一项权利要求所述的方法，其中，所述大分子多聚体VWF基质是从适当VWF氨基酸序列变异的杂合或纯合载体的捐献者血浆中分离而得。
5.根据权利要求1至4中任一项权利要求所述的方法，其中，在步骤a)中再将所述样本与肝磷脂混合。
6.根据权利要求1至5中任一项权利要求所述的方法，其中，在步骤a)中再将所述样本与分离天然GPIba蛋白和/或重组野生型GPIb α蛋白以及瑞斯托霉素或美洲矛头腹毒蛋白混合。
7.根据权利要求1至5中任一项权利要求所述的方法，其中，在步骤a)中再将所述样本与包括一氨基酸序列的重组或合成GPIba蛋白混合，所述氨基酸序列与人类GPIba蛋白的野生型序列(SEQ ID NO:1)相比至少包含氨基酸残基1-268，且分别在位置233和239上具有一个氨基酸取代基Xaa。
8.根据权利要求7所述的方法，其中，所用GPIb α蛋白的位置233和/或位置239上的氨基酸取代基Xaa由缬氨酸残基或丝氨酸残基构成。
9.根据权利要求1至5中任一项权利要求所述的方法，其中，在步骤c)中通过测量瑞斯托霉素辅因子活性来测定所述反应标本中的残留VWF活性。
10.根据权利要求1至5中任一项权利要求所述的方法，其中，在步骤c)中通过下面所述的方法来测定所述反应标本中的残留VWF活性: 其中，将所述反应标本和分离GPIba蛋白混合成一检测标本，其中，使用包括一氨基酸序列的分离G PIb a蛋白，所述氨基酸序列与人类GPIb a蛋白的野生型序列(SEQ ID NO:1)相比至少包含氨基酸残基1-268，且分别在位置233和239上具有一个氨基酸取代基Xaa，以及不在所述检测标本中添加瑞斯托霉素和美洲矛头腹毒蛋白。。
全文摘要
本发明属于凝血诊断技术领域，涉及一种在一样本中体外测定血管性血友病因子(VWF)活性的方法。所述方法包括对GPIbα蛋白功能获得性变异体的使用，这样就可放弃对瑞斯托霉素、美洲矛头腹毒蛋白(Botrocetin)或与瑞斯托霉素或美洲矛头腹毒蛋白等效的其他物质的使用。本发明此外还涉及一种测定ADAMTS-13蛋白酶的血管性血友病因子(VWF)裂解活性的方法。
文档编号G01N33/86GK103076459SQ20121044732
公开日2013年5月1日申请日期2008年7月3日优先权日2007年7月6日
发明者哈拉尔德·阿尔特豪斯, 托比亚斯·奥布斯尔, 于尔根·帕茨克, 赖因哈德·施内彭海姆申请人:西门子医学诊断产品有限责任公司

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测定adamts-13蛋白酶的方法