亚星游戏官网-www.yaxin868.com

专利名称：：一种检测ⅳ型登革病毒ns1抗原的免疫诊断试剂盒的制作方法
技术领域：
：本发明涉及医药领域，具体涉及一种医用配制品，特别是用于诊断IV型登革病毒的试剂盒。
背景技术：
：登革热是一种热带传染�。�通过埃及伊蚊和白纹伊蚊传播，根据E蛋白的抗原性不同分为4个血清型，分别为I型、n型、m型和IV型(简称DV1、DV2、DV3和DV4)。任何型别的登革病毒感染均可引起一系列的临床症状，表现为隐性感染、发热、登革热、或更为严重的登革出血热和登革休克综合征。近年来，由于国际旅游业的发展和传染性疾病的防治措施不当，登革热广泛流行于热带和亚热带的100多个国家和地区，特别是东南亚一带的流行甚为严重。目前，世界上约有25亿人受到登革病毒感染的威胁，每年发生登革病毒感染患者超过1亿人，并且有50万人发展成为登革出血热或登革休克综合征，造成大约30000人死亡。初次感染登革病毒对于同型病毒的再次感染可产生终身的免疫保护作用，但对于其它血清型的再次感染缺乏交叉免疫保护作用，同时由于存在抗体依赖的病毒感染增强效应(ADE)，异型登革病毒再次感染是导致登革热患者发生登革出血热的首要危险因素。而在登革疫区中，往往存在四型登革病毒的交替流行，增加了不同血清型别登革病毒反复感染的危险性，更增加了登革出血热发生的可能性。由于ADE的存在，增加了登革疫苗研制的难度，目前，具有保护性的登革疫苗尚未研制成功，临床上对登革病毒感染还缺乏特异性的治疗药物。实践表明，早期确诊能大大降低登革出血热的发病率和死亡率，因此登革热的治疗很大程度上取决于早期感染的诊断。但是，多数登革病毒感染者早期缺乏特异的临床表现，仅有发热、寒战等流感样症状，难以和其它发热疾病和出血热疾病区分，必须依赖于实验室的诊断。目前登革热的实验室诊断方法主要包括病毒分离、抗体和核酸检测。其中病毒分离是登革病毒感染诊断和血清型鉴定的金标准，但该方法费时而且对于实验室的条件要求较高。尽管病毒核酸的检测方法比传统的病毒分离法更灵敏、更快速，但分子诊断操作相对繁琐，对技术水平要求较高，并较易发生污染导致假阳性结果，同时由于毒株的变异、潜在突变等序列改变也可能引起假阴性结果。而抗体检测试剂不能用于早期诊断，而且由于4个血清型登革病毒之间以及与其它病毒属间存在血清学交叉反应，特别是接种乙型脑炎病毒、黄热病毒疫苗的人群易发生抗体假阳性反应结果。因此，建立一种能够特异性区分登革病毒四个血清型感染的早期诊断试剂盒势在必行。登革病毒的非结构蛋白1(nonstructuralprotein1,NS1)是一种相对保守的糖蛋白，有膜型和分泌型两种形式，在感染细胞中高度表达，具有很强的抗原性，且研究发现在登革热患者的早期血中存在高浓度的NS1循环抗原，因此检测急性期病人血清中的循环NS1抗原可用于早期诊断登革病毒感染或者预警登革出血热(DHF)的发生。通过基于登革病毒NS1的抗原捕获ELISA法来检测登革病毒的方法可分为两类，一类是在多克隆抗体的基础上建立的，这类方法在不同批次的抗血清中存在很大差异，难以重复和实现实验室的标准化。另一类利用NS1的单克隆抗体来检测登革病毒，如商品化的试剂盒Pan-EDengueEarlyELISAtestkit(Panbio，Queensland,Australia)禾卩PlateliaDengueNS1Agkits(Bio-Rad,France)。Pan-EDengueEarlyELISAtestkit含有抗IIV型登革病毒NS1的单克隆抗体，通过ELISA方法来实现登革病毒感染的早期诊断，其敏感度、特异性和稳定性都有了较大的提高。但本发明人进一步研究发现，该试剂盒对IIV型的登革病毒的敏感度不同，分别为195PFU/mL、195PFU/mL、1563PFU/mL、25000PFU/mL，而早期感染登革病毒的患者血液样本中的病毒含量相对较低，用该试剂盒检测m型和iv型登革病毒的感染有可能会出现漏检现象。再者，这两种试剂盒不能区分四种血清型的登革病毒，由于不同血清型的登革病毒感染所引起的临床症状和治疗方案是不同的，临床医师必须尽早确定哪种血清型的登革病毒感染，以便于快速采取有效的治疗措施。因此，及时确定登革病毒感染的类型，是降低登革病毒感染死亡率的前提，也是控制登革病毒扩散的有效措施，而目前市面上的商品化试剂盒均无法达到此目的。
发明内容本发明所要解决的技术问题是克服现有技术的不足，提供一种具有高灵敏度和特异性的IV型登革病毒NS1抗原免疫诊断试剂盒，它可直接检测到血液标本中的DV4NS1抗原，实现登革病毒感染的早期分型诊断。为了解决以上技术问题，本发明提供一种检测IV型登革病毒NS1抗原的免疫诊断试剂盒，该试剂盒是基于双抗体夹心ELISA方法的检测试剂盒，由包被捕获抗体的微孔反应板、样品处理液、与标记物结合的检测抗体、阳性对照物、阴性对照物、浓缩洗液、显色液和终止液组成，其特征在于所述的捕获抗体为单抗2E8A5，由保藏号为CCTCC一C200855的杂交瘤细胞株2E8A5分泌得到；所述的检测抗体为单抗7A6A1，由保藏号为CCTCC—C200854的杂交瘤细胞株7A6A1分泌得到。本发明试剂盒中，所述的单抗2E8A5和单抗7A6Al均是IgGl亚类的免疫球蛋白，其中单抗2E8A5能同时与IV和ni型登革病毒的NS1蛋白结合，由保藏号为CCTCC一C200855的杂交瘤细胞株2E8A5分泌；单抗7A6A1能特异性结合IV型登革病毒，由保藏号为CCTCC一C200854的杂交瘤细胞株7A6A1分泌。所述的杂交瘤细胞株2E8A5和7A6A1是用重组的DV4NS1蛋白和天然的NS1蛋白交叉免疫Balb/c小鼠，然后用免疫后的小鼠脾细胞和商品化的小鼠骨髓瘤细胞NS-1融合，最后用HAT培养基筛选得到。本发明试剂盒中，所述的标记物是指能标记在抗体的非活性部位且可定量分析的物质，例如酶；而相应的显色液则含有能与所述标记物反应并产生颜色变化的物质，例如酶的底物。这些都是本领域的常识，本领域技术人员可根据这些常识轻易地选定标记物与相应的显色液，如辣根过氧化物酶及其底物过氧化氢尿素和四甲基联苯胺(简称TMB)就是ELISA试验中常用的标记物及显色液组合，也同样适用于本发明。所述的样品处理液、浓縮洗液和终止液均是双抗体夹心ELISA方法中的常用试剂，所述的阳性对照物是指IV型登革病毒NS1蛋白，所述的阴性对照物是不含IV型登革病毒NS1蛋白的空白对照物。本发明试剂盒是一种基于双抗体夹心ELISA方法的检测试剂盒，其中所述的捕获抗体2E8A5是一种具有交叉反应性的单抗，间接免疫荧光检测结果显示该单抗能同时结合m型和IV型登革病毒，但检测抗体7A6A1是从一组抗IV型登革病毒NS1蛋白的单克隆抗体中筛选出来的，能特异性结合IV型登革病毒，因此，该试剂盒能准确、快速地检测出IV型登革病毒，而与其它i型、n型和m型登革病毒以及乙型脑炎病毒、黄热病毒均无交叉反应，且对iv型登革病毒具有很高的敏感度，检测IV型登革病毒的敏感度是商品化试剂盒Pan-EDengueEarlyELISAtestkit的64倍，大大降低了漏检的几率，有利于登革病毒的早期诊断和治疗；此外，本发明试剂盒能特异地检测W型登革病毒，有利于对登革病毒感染作出早期分型诊断。同时，该试剂盒成本低，操作简便，能同时快速检测大批样品；主要试剂均以工作液形式提供，操作简便；具有高灵敏度、高特异性的特点；也是目前国际上首个能特异性检测到IV型登革病毒抗原的试剂盒。具体实施例方式下面通过具体的例子和实验报告进一步阐明本发明的试剂盒1、所述的单抗2E8A5和7A6A1的制备方法和鉴定结果(1)免疫抗原的制备本发明用于制备单克隆抗体的免疫原为基因重组DV4NS1蛋白和己灭活天然的病毒抗原。基因重组DV4NS1蛋白是用一种携带DV4NS1基因的工程菌株制备的，其制备按常规方法进行，经用镍一次氮基三醋酸金属亲和层析的方法进行纯化获得NS1抗原，详细的制备方法可参照使用手册。将NS1蛋白纯化后，以考马斯亮蓝(Coomassie)蛋白分析试剂(PIERCE，Cat,No.ED62976)定量。Westernblot对纯化的重组蛋白鉴定结果显示，小鼠抗hisMAb在分子量约45KDa处出现特异性的反应条带，与预测的DV4NS1分子.量大小一致。己灭活天然的病毒抗原，是从DV4感染的病毒宿主细胞(C6/36,—种白蚊伊蚊细胞)获得。(2)免疫小鼠取4-6周龄雌性BALB/c小鼠，第一次采用弗氏完全佐剂与等体积DV4NS1抗原混匀乳化，每只小鼠皮下多点注射30ng，以后每10天以弗氏不完全佐剂与天然的DV4抗原或重组的DV4NS1抗原交替免疫共4次后，于融合前3天每只小鼠腹腔注射DV4NS1抗原1OO吗进行加强免疫。(3)杂交瘤细胞的制备和鉴定加强免疫3天后，无菌操作取小鼠脾脏，制成脾细胞悬液与对数生长期的小鼠骨髓瘤细胞株NS-1按10:1的比例混合，在45%聚乙二醇(PEG,MW4000，Sigma)作用下进行融合。具体方法如下在37"C水浴中，在lmin内缓慢加入1.0mlPEG，边加边轻轻摇匀，分别于lmin、2min、3min、4min和5min内加lml、2ml、3ml、4ml和5ml无血清RPMI-1640培养基终止融合，最后加入10ml含15%胎牛血清的RPMI-1640培养基，室温800rpm离心5min，弃上清，用60ml含15°/。胎牛血清的RPMI-1640培养基轻轻悬起细胞。将此细胞悬液加入6块96孔培养板上，在37X:、5%<:02的二氧化碳培养箱中培养。次日于融合细胞中加入12(^12XHAT培养基。以后每3天用1XHAT培养基换液一次，当克隆长至占孔底面积的1/10时，取培养上清经间接ELISA法用NS1蛋白和DV4病毒进行双筛选。阳性克隆转至24孔培养板中扩大培养，经ELISA和免疫荧光(DV4感染细胞抗原片)复测仍为强阳性的克隆用有限稀释法进行克隆化。克隆化23次至阳性率达100%，选择分泌抗体效价高的两个细胞株扩增培养后置液氮保存，记为杂交瘤细胞株2E8A5和杂交瘤细胞株7A6A1,并于于2008年11月24号在中国典型培养物保藏中心(CCTCC)保藏，其保藏登记号分别为CCTCC一C200855和CCTCC一C200854。(4)抗DV4NS1蛋白单克隆抗体亚类检测采用间接ELISA方法检测，方法如下用DV4抗原包被微孔板，封闭后与杂交瘤细胞培养上清孵育，再分别与1:IOOO倍稀释的HRP标记的兔抗小鼠不同亚类特异性免疫球蛋白反应，其中包括兔抗小鼠IgGl(美国ZYMEDLABORATORIES,INC,目录号61-0120)，兔抗小鼠IgG2a(同上，目录号61-0220)，兔抗小鼠IgG2b(同上，目录号61-0320)，兔抗小鼠lgG3(同上，目录号61-0420)，兔抗小鼠IgM(同上，目录号61-6820)。检测结果显示，上述两株杂交瘤细胞的培养上清均为IgGl阳性，即说明这两株杂交瘤细胞分泌的单克隆抗体均为IgGl阳性。(5)单克隆抗体腹水制备和纯化腹水制备采用体内诱生法制备本发明中单克隆抗体，即在小鼠体内接种杂交瘤细胞制备腹水。具体方法如下每只小鼠腹腔内注射0.5ml弗氏不完全佐剂(Sigma公司)，使瘤细胞能以腹水瘤形式在腹腔内生长。大约12周后，将2><106个对数生长期的杂交瘤细胞悬浮于无血清RPMI1640培养基中，注入小鼠腹腔。约12周后，用7号针头放腹水，离心后收集腹水上清，立即加入叠氮钠至终浓度为0.1%，存放于4'C备用。单抗纯化采用辛酸一硫酸铵沉淀法纯化腹水中的抗体，操作方法如下腹水用60mM、pH5.0醋酸缓冲液稀释2倍，室温下于30分钟内边搅拌边逐滴缓慢加入辛酸，为每毫升稀释前腹水加33pl辛酸，出现大量沉淀，4'C静置2小时，10000g，4。C离心30分钟，取上清，加入1/10体积的pH7.4100mM磷酸盐缓冲液，并用1N氢氧化钠调pH值至7.4，冰浴搅拌下缓慢加入硫酸铵，为每毫升液体加入0.277硫酸铵即为45%饱和度，4'C静置过夜，10000g、4'C离心30分钟，弃上清，沉淀溶于适量IOmM磷酸盐缓冲液，用同样的液体，4'C透析过夜，换液三次。以考马斯亮蓝(Coomassie)蛋白分析试剂(PIERCE,Cat,No.ED62976)定量。测定浓度后的抗体加入终浓度50W的甘油于-8(TC保存。(6)单克隆抗体的特异性鉴定a.间接ELISA法鉴定单克隆抗体的特异性分别用四个血清型重组DVNS1抗原和天然的DV抗原包被微孔板，按照常规的间接ELISA法进行检测。即在包被的微孔板中加入本专利发明的杂交瘤细胞培养上清液，37'C孵育lh，加入l:1000稀释的HRP标记羊抗小鼠IgG(Sigma，Inc)，100—孔37。C孵育30min，加TMB显色液室温避光显色10min，力口1MH2S04终止反应，测450nm吸光值U45Q)。表l结果显示本专利发明的单克隆抗体2E8A5和7A6A1均为DV4的特异性单抗；与其它三型登革病毒均无交叉反应。表1DV4NS1单克隆抗体与重组DV4NS1抗原和天然DV4抗原反应的间接ELISA结果<table>tableseeoriginaldocumentpage7</column></row><table>b.间接免疫荧光法鉴定单克隆抗体的特异性分别用DV1、DV2、DV3和DV4感染C6/36细胞，当有2/3细胞出现病变时，收集细胞，用预冷的lxPBS洗细胞二遍，然后将细胞滴于无菌干燥的玻片上，千燥后，制备成涂片，充分干燥，用冷丙酮固定10分钟后吹千，分别与阳性杂交瘤细胞培养上清和FITC标记的羊抗小鼠IgG孵育，并设立未感染病毒的C6/36细胞抗原片作为阴性对照，最后用0.25%的伊文氏蓝染色后，荧光显微镜下观察荧光图像，以荧光的强度和染色形态进行结果判定，检测抗体强度以(+++++)计为阳性，抗体强度(±)和(一)计为阴性。如表2结果显示，本专利发明的单克隆抗体2E8A5与III型和IV型登革病毒同时结合的交叉性单抗；而7A6A1与DV4抗原特异性结合，而与其它三个血清型DV均无交叉反应。表2DV4NS1单克隆抗体的免疫荧光检测结果<table>tableseeoriginaldocumentpage8</column></row><table>c.免疫印迹鉴定单克隆抗体的特异性将灭活DV4培养液或重组的DV4NS1蛋白，用2XSDS加样缓冲液稀释一倍，将样品加到10%SDS-聚丙烯酰胺凝胶中，电泳分离蛋白质，通过电洗脱使在凝胶上分离出来的蛋白质转印到硝酸纤维膜上，转印膜用含7%脱脂奶和3%BSA的lOraMPBS于4'C封闭24小时，将转印膜装在专门的反应板中，分别加入杂交瘤细胞培养上清中，室温反应l小时，用含有0.5XTVeen20的10mMPBS洗涤膜后，加入1:500倍稀释的HRP标记羊抗鼠IgG，室温反应1小时，用同样的洗涤液洗涤膜后，DAB显色后，用去离子水终止显色。结果显示，本发明的单克隆抗体2E8A5与重组DV4NS1蛋白和灭活DV4培养液在分子量为45千道尔顿可见一条很强的蛋白质结合带，与预测分子量相一致；而特异性单抗7A6A1与重组DV4NS1蛋白和灭活DV4培养液均不产生反应，可能跟单抗识别构象表位有关。2、本发明试剂盒的组成和制备(l)所用试剂的配制a.样品处理液由样品处理液A和样品处理液B组成,其中A为1.5M甘氨酸溶液(PH2.8)，B为1.5MTris-Hcl溶液(PH9.7);b.浓縮洗液含有2%Tween-20的20XPBS，即1L溶液中含有4.56gNaH2P04,58.02gNa2HP04.12H20,175.3gNaCl,15磅20min高压灭菌后，加入20mlTween-20搅匀，使用时20倍稀释；c.阳性对照DV4天然NS1抗原1:1000稀释液；d.阴性对照含0.腦een-20的10mMPH7.4PBS，制备方法如下将4.56gNaH2P04、58.02gNa2HP04.12H20和175.3gNaCl用水溶解并定量至1升，15磅20min高压灭菌，稀释20倍后加入0.1%Tween-20;e.显色液由显色液A和B组成，使用时取二者等量混匀使用。其中显色液A、B的制备方法如下将0.89g柠檬酸和0.16gEDTA二钠溶于1000ml水中，115。C高压30min，降至90。C后加TMB0.25g，摇匀后得显示液A，于4'C闭光保存；将9.33g柠檬酸和14.6gEDTA二钠溶于1000ml水中，115。C高压30min后，降至9(TC后加0.75%过氧化氢尿素12.8ml，摇匀后得显示液B,于4'C闭光保存；f.终止液1M跳。(2)所述包被单抗2E8A5的微孔反应板的制备方法如下将本发明单抗2E8A5用10mMpH7.6的磷酸盐缓冲液稀释至lOlig/ml，用150n1/孔包被聚苯乙烯96孔微孔板，于4t^过夜。拍干后，每孔加入300^1/孔的0.25%酪蛋白(Sigma)的封闭液，于4'C过夜以封闭非特异性结合位点。甩干板条，真空干燥1224h，用铝膜袋真空包装4'C保存备用。(3)所述辣根过氧化物酶标记的单抗7A6A1的制备方法如下采用改良过碘酸钠法，操作方法如下将5mgHRP搅拌溶解于lmL双蒸水中，加入0.2mL新配0.1M过碘酸钠避光室温搅拌30min，置lmMpH4.4醋酸钠缓沖液中，4'C透析过夜；次日加入0.2MpH9.5碳酸盐缓冲液使PH值达9.0~9.5后，与预先调节pH至9.5的抗体10mg混合，在室温避光轻轻搅拌23小时，然后加入100n1新配4mg/mL硼氢化钠，4'C避光轻搅过夜；次日将过夜的抗体溶液用1XPBS稀释510倍，冰浴搅拌下逐滴加入等体积饱和硫酸铵(硫酸铵用前先用氨水调pH至7.4),置4'C避光过夜；12OOOrpm4'C离心30rain，弃上清，沉淀溶于适量1XPBS缓冲液，并置1XPBS中4匸透析过夜，换液三次。收集结合物加入终浓度50%的2%BSA甘油-PBS保护剂，最后用磷酸盐缓冲液稀释1000倍，即为工作液。3、应用本发明试剂盒检测血清样品中的W型登革病毒NS1抗原(1)检测方法取待测的样品50ul，加入样品处理液A50U1,混匀后37。C作用lh，再加样品处理液B1混匀，取100n1加入2E8A5包被的聚苯乙烯96孔微量测试板中，同时设阴性对照和阳性对照，37'C温育lh，浓缩洗涤液20倍稀释后洗涤板条，洗板6次后，加入1:1000稀释的HRP标记的单抗7A6A1，100ul/孔，37。C温育30min，同上洗板8次后，加显色液(显色液A和B等量混合，现用现配)，100yl/孔，室温避光显色10niin后，加入终止液，100u1/孔，终止反应。(2)结果判定以空白孔调零，于450nm波长测定吸光度(A值)。阳性对照平均值》0.50，阴性对照平均值《0.10，实验成立。样品A值》阴性对照A值平均值X2.1,则判为阳性，反之为阴性。(3)本发明试剂盒检测相关病毒的特异性和灵敏度分析通过对DV1、DV2、DV3、DV4进行空斑实验确定病毒滴度分别为2.6X105PFU/mL、6.88X104PRJ/mL、2.37X105PFU/mL、7.84X105PFU/mL。采用上述建立的方法检测灭活的DV1、DV2、DV3、DV4，从1乂105开始倍比稀释多个梯度进行检测，同时以检测四个血清型DVNS1抗原的商品化试剂盒"pan-EDENGUEEARLYELISA"(Panbio,Australia)进行同步检测比较，操作步骤按照试剂盒说明书进行。本发明试剂盒的检测结果显示对DV4培养上清的检测灵敏度高达391PFU/ml，与其余3种血清型登革病毒培养液无交叉反应，并且与其它黄病毒属的病毒如乙脑病毒及黄热病毒均不发生交叉反应。说明建立的双抗体夹心抗原捕获ELISA检测具有登革病毒血清型特异性。如表3所示。商品化的pan-EDENGUEEARLYELISA检测结果显示，对四个血清型的DV培养上清的检测敏感性不同，详见表4结果。商品化试剂盒对DV4培养上清的检测灵敏度为25000PFU/ml，远低于本发明的试剂盒检测DV4培养上清的灵敏度。虽然本发明试剂盒的结果判读方式和商品试剂盒pan-EDENGUEEARLYELISA的不一样，具体体现在认定阳性的标准不同，但是在以下特异性实验和临床实验中，本发明试剂盒按上述判读方式检测都没有出现假阳性，说明本发明试剂盒的阳性标准是可靠的，同时也进一步证明本发明试剂盒具有比现有技术更好的灵敏度和特异性。表3本发明试剂盒检测四个血清型DV培养上清结果DV病毒病毒滴度(PFU/ml)500002500012500625031251563782391195DV10.078/-0.081/-0.08/-0.08/-0.086/-0.083/-0.083/-0.081/-0.082/-DV20.08/-0.078/-0.083/-0.08/-0.092/-0.1/-0.11/-O.脂-0.088/-DV30.116/-0.1/-0.119/-0.117/-0.118/-O.薩-0.12/-0.124/-O.讀-DV44.03/+3.987/+3.49/+2.362/+1.218/+0.693/+0.376/+0.222/+0.169/-Control0.1/-0.089/-0.094/-0.081/-0.097/-0.091/-0.098/-0.107/-0.1/-表注a:此试剂盒的结果判定如下样品检测值》阴性对照平均值的2.1倍(计算为0.095X2.1=0.2〉为阳性，反之为阴性。表4进口试剂盒pan-EDENGUEEARLYELISA检测四个血清型DV培养上清结果DV病毒病毒滴度(PFU/ml)50000250001250062503125156378239119597DV1104.8/+103.3/+103.0/+97.9/+92.5/+73.4/+53.2/+31.4/+16.7/+8.7ADV2103.7/+102.9/+99.4/-93.4/+83.3/+63.3/+41.1/+23.9/+11.6/+6.8/-DV395.7/+87.1/+76.3/+53.3/+32.0/十17.9/+9.7/-5.7/-3.3/-2.1/-DV431.7/+17.6/+9.7/隱5.6/-3.2/陽2.4/-1.7/-1.6/-1.4/-1.3/-Control2.2/國1.8/-1.6/-1.5/-1.4/-1.4/-1.4/-1.4/-1.4/-1.4/-表注此试剂盒的结果判定如下显示值<9.0为阴性，显示值9.0-11.0为可疑阳性，显示>11.0为阳性。4、临床试验首先将临床血清标本用1.5M甘氨酸(PH2.8)进行预处理使NS1与血清中的抗体形成的复合物解离，从而释放游离的NS1抗原，再用1.5MTris-Hcl(PH9.7)中和后用上述建立的10方法进行检测。本发明试剂盒检测正常人血清标本的特异性本发明的试剂盒检测了500例正常人血清，用此检测结果确定本方法的临界值。对检测值进行分析，计算得平均值为0.125，标准差为0.025，以平均值加上5个标准差作为本方法的检测临界值即0.125+0.025X5=0.25，以大于或等于临界值作为判断检测值阳性标准，500例正常人血清均为阴性，可确定本方法的特异度为100%。权利要求1、一种特异性检测IV型登革病毒NS1抗原的免疫诊断试剂盒，该试剂盒是基于双抗体夹心ELISA方法的检测试剂盒，由包被捕获抗体的微孔反应板、样品处理液、与标记物结合的检测抗体、阳性对照物、阴性对照物、浓缩洗液、显色液和终止液组成，其特征在于所述的捕获抗体为2E8A5，由保藏号为CCTCC-C200855的杂交瘤细胞株2E8A5分泌得到；所述的检测抗体为7A6A1，由保藏号为CCTCC-C200854的杂交瘤细胞株7A6A1分泌得到。2、如权利要求1所述的试剂盒，其特征在于所述的标记物是辣根过氧化物酶。全文摘要本发明公开了一种检测特异性IV型登革病毒抗原的免疫诊断试剂盒，该诊断试剂盒包括包被单抗2E8A5的微孔反应板、样品处理液、结合有标记物的单抗7A6A1、阳性对照、阴性对照、浓缩洗液、显色液和终止液。该试剂盒能特异性的检测IV型登革病毒抗原，与其他3种血清型登革病毒抗原无交叉反应，检测IV型登革病毒培养上清敏感度是商品化同类试剂盒Pan-EDengueEarlyELISAtestkit的64倍，大大提高了临床血清样本检测的灵敏度，同时也降低了临床应用中的漏检现象。文档编号G01N33/569GK101551393SQ20091003836公开日2009年10月7日申请日期2009年4月2日优先权日2009年4月2日发明者丁细霞,车小燕申请人:南方医科大学